Противоопухолевые вакцины на основе дендритных клеток: от экспериментов на животных моделях до клинических испытаний
- Авторы: Марков O.В.1, Миронова Н.Л.1, Власов В.В.1, Зенкова М.А.1
-
Учреждения:
- Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН
- Выпуск: Том 9, № 3 (2017)
- Страницы: 27-38
- Раздел: Обзоры
- Дата подачи: 17.01.2020
- Дата публикации: 15.09.2017
- URL: https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/10368
- DOI: https://doi.org/10.32607/20758251-2017-9-3-27-38
- ID: 10368
Цитировать
Аннотация
Стандартные методы терапии опухолевых заболеваний обладают рядом недостатков, главные из которых неспецифичность и тяжелые побочные эффекты. Кроме того, опухолевые заболевания сопряжены с подавлением иммунной системы, что может быть причиной неэффективности стандартных методов лечения. Поэтому актуальной представляется разработка иммунотерапевтических подходов, обладающих специфическим противоопухолевым действием и приводящих к активации иммунной системы. Среди множества методов выделяются вакцины на основе дендритных клеток (ДК), нагруженных опухолевыми антигенами ex vivo, способные индуцировать противоопухолевый ответ цитотоксических Т-клеток. В настоящем обзоре рассмотрены подходы к приготовлению ДК-вакцин, а также результаты изучения противоопухолевой активности ДК-вакцин на мышиных моделях in vivo и в клинических испытаниях.
Полный текст
ВВЕДЕНИЕ Дендритные клетки (ДК) - профессиональные ан- тигенпредставляющие клетки, главной функцией которых являются захват антигенов, процессинг и представление их наивным Т-лимфоцитам для ак- тивации иммунного ответа против захваченного ан- тигена. Уникальная способность ДК активировать CD4+ Т-хелперные клетки и CD8+ цитотоксические Т-лимфоциты (ЦТЛ) и определять таким образом направленность иммунных реакций привлекает все большее внимание при создании противоопухоле- вых вакцин, способных специфически действовать на определенные типы опухолей. Обнаружение опу- холевых антигенов (ОАГ), т.е. белков, сверхэкспрес- сия которых специфична для определенных типов опухолей, стало толчком к их использованию для на- грузки ДК. Сейчас известны ОАГ таких типов опу- холей, как меланома (gp100, Melan-A/Mart-1, тиро- зиназа, MAGE-1 [1, 2]), рак предстательной железы (PSA [3], PSCA [4]) и др. В настоящее время противоопухолевые ДК- вакцины активно изучают на мышиных моделях in vivo и в клинических испытаниях. В 2010 году Управлением по контролю качества пищевых про- дуктов и медикаментов США (FDA) была одобрена первая и пока единственная в мире терапевтическая клеточная вакцина Sipuleucel-T против устойчивого к кастрации метастатического рака предстательной железы на основе ДК, нагруженных рекомбинант- ным гибридным белком, состоящим из простатиче- ской кислой фосфатазы (ПКФ) и гранулоцитарно- макрофагального колониестимулирующего фактора (ГМ-КСФ) [5]. Таким образом, существуют все осно- вания для появления в ближайшем будущем высо- коэффективных противоопухолевых иммунотера- певтических подходов, основанных на применении модифицированных дендритных клеток. В настоящем обзоре стратегии применения ДК, ак- тивированных под действием разных ОАГ, рассмо- трены на мышиных моделях опухолевых заболева- ний in vivo и в клинических исследованиях. ПРИГОТОВЛЕНИЕ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ДК- ВАКЦИН Можно выделить четыре главные группы подходов к терапии опухолей с использованием ДК: (1) инъ- екции ДК, нагруженных опухолевыми антигенами ex vivo; (2) системное введение опухолевых антиге- нов для нагрузки ДК in vivo; (3) инъекции немоди- фицированных зрелых ДК; (4) инъекции экзосом ДК. В настоящем обзоре мы остановимся на классических ДК-вакцинах, приготовленных путем нагрузки ДК опухолевыми антигенами ex vivo. В качестве источников предшественников ДК (преДК) при приготовлении ДК-вакцин обычно ис- пользуют клетки костного мозга (в работах с мыши- ными моделями) и моноциты периферической крови (в клинических исследованиях). Стандартный способ приготовления ДК-вакцин представляет собой ин- кубацию преДК в присутствии цитокинов ГМ-КСФ и ИЛ-4 в течение 6-8 дней, нагрузку незрелых ДК опухолевыми антигенами с последующей актива- цией созревания ДК с помощью воспалительных цитокинов (ФНО-α, ИЛ-1β, ИЛ-6, ИФН-γ и др.) или ксеногенных факторов - ЛПС (бактериального липополисахарида), ОК432 (Streptococcus pyogenes низкой вирулентности), KLH (гемоцианина моллюска Fissurella apertura) и др. На эффективность противоопухолевого иммун- ного ответа, активируемого модифицированными ДК, большое влияние оказывают ОАГ, которыми на- гружают незрелые ДК. В качестве источников ОАГ используют: лизаты опухолей [6-9], синтетические опухолеспецифические пептиды [10-13], опухолевые белки [14], апоптотические опухолевые клетки [15], нуклеиновые кислоты (ДНК [16], мРНК [17], суммар- ную опухолевую РНК [18, 19]) и вирусные векторы [15, 20], кодирующие ОАГ, а также иммуностимули- рующие молекулы (ИЛ-12 [21, 22]), факторы проли- ферации (ГМ-КСФ [23]) и хемотаксические сигналы (лимфотактин [24]). Незрелые ДК способны захватывать опухолевые антигены с помощью множества механизмов, таких, как фагоцитоз, макропиноцитоз, рецепторопосредо- ванный эндоцитоз и др., поэтому доставку опухоле- вых антигенов белковой природы (белки, пептиды и лизаты) или апоптотических опухолевых клеток в ДК осуществляют путем пассивного добавления ОАГ к незрелым ДК. В случае доставки в ДК нуклеиновых кислот (НК), кодирующих ОАГ, приходится использовать более сложные подходы. НК представляют собой гидрофильные полианионные молекулы, которые, во-первых, со слабой эффективностью электроста- тически взаимодействуют с отрицательно заряжен- ной плазматической мембраной клетки, во-вторых, не способны проникать внутрь клетки через гидро- фобный липидный бислой клеточной мембраны. Более того, в биологических жидкостях незащищен- ные НК быстро разрушаются нуклеазами. Также известно, что свободные мРНК способны взаимо- действовать с толл-подобными рецепторами (TLR3, TLR7, TLR8), что приводит зачастую к нежела- тельной активации иммунной системы [25]. Поэтому для доставки НК в ДК используют физические ме- тоды (электропорация [16, 26-28], сонопорация [29, 30]); вирусные системы (аденовирусы, аденоассоции- рованные вирусы, ретровирусы, лентивирусы, вирус осповакцины и др.) [31-38]; невирусные системы (по- ликатионные полимеры [31, 39-41], катионные липо- сомы [28, 42-45]). ПРИМЕНЕНИЕ ДК, НАГРУЖЕННЫХ ОАГ, В ТЕРАПИИ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ НОВООБРАЗОВАНИЙ В табл. 1 и 2 представлены результаты изучения противоопухолевых ДК-вакцин на мышиных мо- делях (работы 2010-2015 гг.) и в клинических ис- пытаниях (работы 2005-2015 гг.). При отборе ис- следований учитывали разнообразие заболеваний, подвергавшихся лечению ДК-вакцинами, а также источников ОАГ для нагрузки ДК. Следует отметить высокое разнообразие источников ОАГ, используе- мых для нагрузки ДК, в работах с мышиными моде- лями опухолевых заболеваний, начиная от класси- ческих опухолевых пептидов и лизатов и заканчивая производными нейраминовой кислоты и живыми опухолевыми клетками. В клинических испытаниях в качестве основных источников ОАГ для нагрузки ДК использовали, прежде всего, АГ белковой при- роды - лизаты опухолевых клеток, белки и пептиды. Использовали также разные способы введения вак- цины (внутрикожные, внутривенные, в лимфатиче- ские узлы и т.д.) [46]. ЭФФЕКТИВНОСТЬ ДК-ВАКЦИН НА МЫШИНЫХ МОДЕЛЯХ in vivo Нами рассмотрены результаты 15 исследований ДК-вакцин, выполненных с 2010 по 2015 год на мы- шиных моделях. Среди них восемь посвящены тера- певтическим ДК-вакцинам, в которых ДК вводили мышам, носителям опухолей; четыре - профилакти- ческим ДК-вакцинам, в которых ДК вводили живот- ным до трансплантации опухоли, и три исследова- ния - обоим типам ДК-вакцин. Противоопухолевый потенциал ДК изучали на мышиных моделях таких опухолей, как опухоли толстого кишечника [47, 48], гепатоцеллюлярная карцинома [49, 50], лимфомы Дальтона [51] и EL4 [52], лейкоз FBL3 [53], опухоли молочной железы 4Т1 [54], меланома В16 [30, 55-57], карцинома легких Льюис [58, 59] и плоскоклеточ- ный рак легкого SCCVII [60] (табл. 1). Практически во всех рассмотренных работах ДК получали инку- бацией костномозговых предшественников ДК в при- сутствии цитокинов ГМ-КСФ и ИЛ-4. Как терапев- тические, так и профилактические ДК-вакцины животным обычно вводили 2-3 раза с интервалом в 7 дней преимущественно с помощью подкожных инъ- екций, реже применяли внутрибрюшинные или вну- тривенные инъекции. В качестве источника ОАГ для нагрузки ДК чаще всего использовали антигены белковой природы, прежде всего лизат и суммарный белок опухолевых клеток. Используемые вакцины можно разделить на: (1) ДК-вакцины без дополнительных стимулов (меланома В16 [30], карцинома легких Льюис [59]); (2) ДК-вакцины, дополнительно обработанные siРНК против иммуносупрессорного фермента индоламин- 2,3-диоксигеназы (опухоль молочной железы 4Т1 [54]) или полисахаридным иммуностимулятором растительного происхождения (лимфома EL4 [52]); (3) ДК-вакцины, комбинированные с инъекциями кукурбитацина I, селективного ингибитора STAT3 опухолевых клеток (лимфома Дальтона [51]). Кроме того, на модели рака толстого кишечника в качестве источника ОАГ использовали опухолевый пептид AH1 (фрагмент gp70) в сочетании с хелперным бел- ком неопухолевой природы (овальбумин), основная функция которого заключалась в увеличении ста- бильности и эффективности презентации антигенов ДК Т-лимфоцитам [47]. В случае модели гепатоцел- люлярной карциномы для нагрузки ДК использовали гибридный белок, представляющий собой карбоанги- дразу 9, соединенную с мембранным белком бакте- рии Acinetobacter baumannii [50]. Еще один достаточно распространенный источник ОАГ для нагрузки ДК - апоптотические опухолевые клетки, использовали в модели плоскоклеточного рака легкого SCCVII [60]. ДК модифицировали также генетическими кон- струкциями, а именно аденовирусными векторами, кодирующими ОАГ (рак толстого кишечника [48], ге- патоцеллюлярная карцинома [49], карцинома легких Льюис [58]), или мРНК, кодирующей гибридный по- липептид β2m-опухолевый пептид-TLR4, содержа- щий ОАГ, соединенный с компонентами как MHC I, так и толл-подобного рецептора TLR4 (меланома В16 [55]). Новыми источниками ОАГ, применявшими- ся для активации ДК, стали N-фенилацетил-D- нейраминовая кислота - искусственно синтезиро- ванное производное нейраминовой кислоты (модели лейкоза FBL3 и меланомы В16 [53]), а также живые опухолевые клетки (модель меланомы В16 [56, 57]). Все рассмотренные ДК-вакцины обладали значи- тельной эффективностью и приводили к снижению размеров опухоли в 1.5-3 раза относительно контро- ля [47-50, 52-54, 58], причем введение ДК-вакцин, нагруженных опухолевым лизатом, в комбинации с инъекциями кукурбитацина I приводило к полному исчезновению лимфомы Дальтона [51]. Кроме того, наблюдалась полная защита животных от развития меланомы В16 после введения профилактических ДК-вакцин, трансфицированных мРНК, кодирую- щей полипептид β2m-опухолевый пептид-TLR4 [55], или приготовленных с использованием живых кле- ток меланомы В16 в качестве источника ОАГ [56]. Противоопухолевые ДК-вакцины значительно сни- жали количество метастазов у мышей [30, 53, 57, 59, 60], существенно увеличивали продолжительность жизни животных-опухоленосителей [47, 49, 51, 53, 55, 58, 60], а также индуцировали развитие силь- ного противоопухолевого ответа цитотоксических Т-клеток [47-50, 53-56, 58, 60]. Таким образом, полученные на мышиных моде- лях опухолевых заболеваний многообещающие ре- зультаты как терапевтического, так и профилакти- ческого применения ДК-вакцин указывают на их высокую перспективность и позволяют надеяться на появление эффективных противоопухолевых ДК-вакцин. ЭФФЕКТИВНОСТЬ ДК-ВАКЦИН В КЛИНИЧЕСКИХ ИСПЫТАНИЯХ Многообещающие результаты, полученные на мы- шиных моделях in vivo, побудили исследовате- лей еще в конце 90-х годов прошлого века перейти к клиническим испытаниям противоопухолевых ДК- вакцин. В клинических испытаниях, проводимых в течение почти 20 лет, задокументирована безопас- ность противоопухолевой иммунотерапии с помощью ДК. Вакцинация ДК хорошо переносится организмом [61], вызывает слабые побочные эффекты, такие, как локальные воспалительные реакции в местах инъекций и лимфатических узлах [62, 63], иногда наблюдаются проявления, сходные с симптомами гриппа [63, 64]. Тем не менее, несмотря на свою без- опасность и перспективность, иммуновакцинация он- кологических больных ДК-вакцинами в большинстве случаев оказалась менее эффективной, чем в экс- периментах на мышиных моделях. Это может быть связано с различными причинами, в том числе с тем, что в большинстве исследований ДК-вакцинацию применяют у пациентов с последними стадиями за- болеваний, имеющими крайне агрессивные опухоли, не отвечающие на стандартную терапию, а также с более сильной иммуносупрессорной активностью опухолей человека. Несмотря на отсутствие большо- го количества впечатляющих клинических резуль- татов, дальнейшая разработка противоопухолевых ДК-вакцин не прекращается: углубляется понима- ние функционирования ДК, испытываются новые источники опухолевых антигенов и иммуностиму- лирующие агенты для нагрузки и активации ДК, оцениваются возможности комбинации ДК-вакцин с другими подходами. Мы попытались оценить разнообразие и клиниче- скую эффективность ДК-вакцин в случае опухолей различного происхождения. С этой целью проанали- зированы результаты 20 работ, выполненных за пе- риод с 2005 по 2015 год, в большинстве из которых ДК-вакцины проходили фазы I и II клинических ис- следований (табл. 2). Эти исследования проводили на заболеваниях различных нозологических форм, в них использовали различные опухолевые анти- гены, нагружаемые в ДК, а также схемы лечения и комбинации ДК-вакцин с другими терапевтически- ми подходами. Три ДК-вакцины прошли фазу III исследований, причем одна из них, Sipuleucel-T, применявшая- ся при кастрационно-резистентном раке предста- тельной железы, была впоследствии одобрена FDA под коммерческим названием Provenge® [5]. Противоопухолевый потенциал ДК-вакцин оце- нивали на пациентах с опухолями органов пище- варения (печень, поджелудочная железа и толстая кишка), головного мозга (глиобластома), крови (мие- лолейкоз, лимфоцитарный лейкоз, лимфома), кост- ной ткани (остеосаркома), репродуктивных органов (яичники, предстательная железа), кожи (мелано- ма) и легких (немелкоклеточный рак) как после хи- рургического удаления опухолей и прохождения стандартных курсов химио- или радиотерапии, так и не получавших предварительного лечения (табл. 2). Результативность ДК-вакцин оценивали по двум критериям - иммунологическому и клини- ческому. Основными иммунологическими характе- ристиками, измеряемыми в клинических исследова- ниях ДК-вакцин, были реакция иммунной системы на ОАГ (реакция гиперчувствительности типа IV на опухолевые антигены (DTH-реакция)), присут- ствие комплексов HLA с опухолевыми антигенами на поверхности ДК, экспрессия перфорина/гран- зима CD8+ Т-лимфоцитами, активность цитоток- сических CD8+ Т-лимфоцитов против опухолевых клеток, уровень синтеза ИФН-γ Т-лимфоцитами, количество регуляторных Т-клеток в крови и опухо- левых клеток в костном мозге, концентрация опухо- левых маркеров (PSA, CEA) в сыворотке крови и т.д. (табл. 2). Клинический ответ на иммунотерапию ДК-вакцинами оценивали по выживаемости паци- ентов, наличию ремиссии/рецидивов заболевания, причем признаком прогрессии заболевания считали увеличение размеров опухоли на 20%, стабильного состояния - отсутствие видимых изменений размера опухоли, частичного ответа, или частичной ремис- сии - снижение размеров опухоли на 30%, полного ответа, или полной ремиссии - исчезновение опухоли (табл. 2). В большинстве рассмотренных нами работ ДК по- лучали из мононуклеарных клеток периферической крови, которые культивировали в присутствии цито- кинов ГМ-КСФ и ИЛ-4. В одном случае для приготов- ления ДК-вакцины использовали ГМ-КСФ и ИЛ-13 [79]. В качестве противоопухолевых вакцин, прохо- дивших фазу III испытаний, использовали неклас- сические ДК-вакцины: ДК, выделенные из легочных лимфоузлов, применяли при немелкоклеточном раке легкого [81]; вакцину Sipuleucel-T, представлявшую собой клеточный препарат, выделенный из лейкафе- резного материала, в состав которого входили, в том числе ДК, применяли при раке предстательной же- лезы [5, 83]. В качестве источников ОАГ для нагрузки ДК чаще всего использовали антигены белковой приро- ды - пептиды, синтетические белки, а также лизаты опухолевых клеток (в 15 работах из 20). Пептидные ОАГ применяли как в виде одиночного антигена (WT-1 или MUC1 при опухолях поджелудочной железы [65, 66]), так и смеси антигенов (MAGE1, TRP-2, gp100, HER-2, ИЛ-13Rα2 при глиобласто- мах [67]; gp100, тирозиназу, MAGE-A1,-A2,-A3, MART-1 при меланоме [79]; Тах-пептиды вируса HTLV-1 при Т-клеточном лейкозе и лимфоме [72]; а также фрагменты hTERT, Her2/neu и PADRE при раке яичников [75]). Также для нагрузки ДК использовали мРНК, которые кодировали один антиген (СЕА при раке толстого кишечника [68]) или набор антигенов (MAGE-A1,-A3,-C2, тирози- наза, MelanA/MART-1 и gp100 при меланоме [77]). При гепатоцеллюлярной карциноме ДК нагружа- ли химерными белками, содержащими такие ОАГ, как α-фетопротеин, глипикан-3 и MAGE-3, каждый из которых был соединен с пептидом цитоплазмати- ческой трансдукции [69]. Другой гибридный белок, содержащий PSA, соединенный с ГМ-КСФ, исполь- зовали для нагрузки вакцины Sipuleucel-T [5, 83]. Лизаты опухолевых клеток использовали для при- готовления ДК-вакцин против остеосаркомы [74] и меланомы [76, 78, 80], причем чаще всего лизат готовили из аутологичных опухолевых клеток. ДК часто нагружали также апоптотическими опухоле- выми клетками, например, в ДК-вакцинах против миелоидного [71] и лимфоцитарного лейкоза [73] и рака предстательной железы [82]. В ДК-вакцине против немелкоклеточного рака легкого ДК вообще не нагружали ОАГ, а использовали вместе с лимфо- цитами после совместной инкубации в присутствии ИЛ-2 [81]. Как известно, введение в организм-опухолено- ситель незрелых ДК может вызвать развитие то- лерантности иммунной системы к опухолевым антигенам, что, в конечном итоге, приведет к еще большей опухолевой прогрессии [84]. Поэтому практически во всех клинических испытаниях ДК- вакцин большое внимание уделяется агентам, сти- мулирующим созревание ДК. С этой целью исполь- зовали как одиночные провоспалительные цитокины (ФНО-α или ИФН-γ), так и коктейли, содержащие набор провоспалительных цитокинов, простаглан- дин Е2, а также в некоторых случаях поли (I : C)- олигонуклеотиды, бактерии S. pyogenes низкой ви- рулентности (ОК432), бактерии Klebsiella pneumoniae или гемоцианин F. apertura (KLH) (табл. 2). Несмотря на разнообразие протоколов иммуноте- рапии опухолей с помощью ДК-вакцин, в них мож- но выявить и общие черты. ДК вводят в основном внутрикожно или подкожно 3-4 раза с интервалом 7-14 сут. Объем дозы составляет в среднем 106-107 ДК. В некоторых случаях ДК-вакцинация может сочетаться с химиотерапией (гемцитабин при опухоли поджелудочной железы [65]; циклофосфамид при лимфоцитарном лейкозе [73] и раке яичников [75], доцетаксел при раке предстательной желе- зы [82]), с применением других иммунных клеток (цитокин-индуцированных киллерных клеток, т.е. Т-лимфоцитов и натуральных киллеров, активиро- ванных ИЛ-1, ИЛ-2, ИФН-γ и анти-CD3-антителами при опухолях печени [70]; опухольинфильтрирую- щих лимфоцитов при меланоме [76]), а также с инъ- екциями цитокинов (ГМ-КСФ при лимфоцитарном лейкозе [73], ИЛ-2 при остеосаркоме [74], ИФН-α-2b при меланоме [77]). Практически во всех рассмотренных нами рабо- тах показано, что введение ДК-вакцин приводит к активации противоопухолевого иммунного отве- та: нарабатываются опухолеспецифические цито- токсические CD8+ Т-лимфоциты, усиливается экс- прессия перфорина и гранзима, а также продукция ИФН-γ, у части пациентов развивается реакция гиперчувствительности на опухолевые антигены (DTH-реакция), снижается количество регулятор- ных Т-клеток и т.д. Однако, несмотря на довольно значительный иммунологический ответ, клиниче- ская результативность противоопухолевой тера- пии с помощью ДК является менее впечатляющей. Клинический ответ либо довольно слабый, либо от- сутствует, что выражается в большом количестве рецидивов и прогрессии опухолей. Низкой эффек- тивностью обладает даже Sipuleucel-T - единствен- ная противоопухолевая ДК-вакцина, получившая одобрение FDA. Иммунотерапия с использованием этой вакцины не привела к ремиссии ни у одного пациента, в подавляющем большинстве случаев заболевание прогрессировало, хотя выживаемость пациентов увеличилась в 1.2 раза по сравнению с группой, получавшей плацебо [83]. Таким образом, можно сделать вывод, что активация опухолеспеци- фического иммунного ответа после ДК-вакцинации не всегда приводит к значимым клиническим ре- зультатам. Это можно объяснить, прежде всего, негативным действием опухоли на иммунную си- стему. Даже при условии, что противоопухолевые Т-лимфоциты будут надлежащим образом акти- вированы ДК-вакцинами, иммунотерапия может потерпеть неудачу, поскольку опухоль способна уходить от иммунного надзора путем подавления функциональной активности иммунокомпетентных клеток, в том числе Т-лимфоцитов и ДК, используя различные механизмы [85]. На клиническую значимость ДК-вакцинации ука- зывает ремиссия опухолей у ряда пациентов. Так, например, более чем у половины больных раком яичников (6/11) иммунотерапия ДК, нагруженны- ми смесью опухолеспецифических пептидов (hTERT 988Y, Her2/neu 369VV2V9, Her2/neu 689 и PADRE), в комбинации с инъекциями циклофосфамида, при- вела к отсутствию признаков заболевания в течение 36 мес., 36-месячная выживаемость составила 90% [75]. Это один из самых высоких показателей клини- ческой результативности ДК-вакцин в работах, рас- смотренных в настоящем обзоре. Большое количество ремиссий отмечено у паци- ентов с меланомой, получавших ДК-вакцины, на- груженные смесью мРНК, кодирующих ОАГ MAGEA1,- A3,-C2, тирозиназу, MelanA/MART-1 и gp100, связанные с HLA II-направляющими последователь- ностями, в комбинации с инъекциями ИФН-α-2b [77]. За средний период наблюдения (6.4 года) полная ре- миссия наблюдалась у 10 из 30 пациентов. Средняя безрецидивная выживаемость составила 22 мес. Средняя двух- и четырехлетняя выживаемость - 93 и 70% соответственно. Иммунный ответ против ас- социированных с меланомой антигенов наблюдался у четырех из 10 пациентов [77]. К полной или частичной ремиссии меланомы при- водило также применение ДК-вакцин, в которых в качестве источника ОАГ для нагрузки ДК исполь- зовали лизаты как аутологичных клеток меланомы (1/8 пациентов) [76], так и аллогенных клеточных линий M44, COLO829, SK-MEL28 (полный ответ у 1 из 33, частичный - у 2 из 33 пациентов) [80]. Следует отметить, что меланома довольно часто использует- ся для клинического исследования противоопухоле- вой активности ДК и относительно лучше поддается иммунотерапии, чем другие типы опухолей. Высокая эффективность ДК-вакцин отмечена также в пилотном клиническом исследовании ДК против Т-клеточного лейкоза и лимфомы, в котором принимали участие три пациента [72]. В качестве ДК-вакцин использовали ДК, нагруженные Tax- пептидами Т-лимфотропного вируса человека типа 1 (LLFGYPVYV и SFHSLHLLY), которые созревали под действием стандартного стимула - ФНО-α в ком- бинации с ксеногенными факторами KLH и ОК432. После ДК-вакцинации у всех трех пациентов наблю- дали значимые клинические ответы: полную ремис- сию (1/3), частичную ремиссию (1/3) и стабилизацию заболевания (1/3). Эффективный клинический ответ был связан с развитием Tax-специфического ответа ЦТЛ у всех пациентов [72]. Выживаемость пациентов также является важным показателем эффективности противоопухолевой ДК-вакцинации. Следует отметить, что практически все клинические исследования показывают, что вве- дение ДК-вакцин больным с опухолями различно- го типа приводит к увеличению их выживаемости и продолжительности жизни по сравнению с паци- ентами, не получавшими ДК-вакцины. Так, в рассмотренных нами работах одно из самых значительных увеличений выживаемости достигнуто у пациентов с опухолями поджелудочной железы и желчных про- токов, которым вводили ДК, нагруженные пептидом MUC-1 и стимулированными для созревания цитоки- нами ФНО-α, ИЛ-1β, ИЛ-16 - у четырех из 12 паци- ентов средняя выживаемость составила более 7 лет [66]. Более подробно остановимся на трех клинических исследованиях противоопухолевых ДК-вакцин, на- ходившихся в фазе III испытаний. В первом иссле- довании вакцину на основе ДК и активированных киллерных Т-лимфоцитов в комбинации с химиоте- рапией применяли у пациентов с немелкоклеточным раком легкого [81] после хирургического удаления опухоли. В исследовании приняли участие 103 па- циента, которых разделили на две группы: группа А получала иммунохимиотерапию, группа Б - толь- ко химиотерапию. Использовали вакцину на осно- ве ДК и активированных киллерных Т-клеток, которые выделяли из содержимого лимфатиче- ских узлов, расположенных в местах локализации опухолей, и культивировали в присутствии ИЛ-2 с последующим добавлением лимфоцитов перифе- рической крови. Двухлетняя общая выживаемость в группах А и Б составила 93.4 и 66.0% соответ- ственно; пятилетняя - 81.4 и 48.3% соответственно. Двух- и пятилетняя выживаемость без рецидивов составила 68.5, 41.4 и 56.8, 26.2% в группах А и Б со- ответственно [81]. В двух других исследованиях оценивали ДК- вакцину Sipuleucel-T, которую применяли при ка- страционно-резистентном раке предстательной железы. Однако результаты клинических испыта- ний Sipuleucel-T оказались менее впечатляющими по сравнению с другими противоопухолевыми ДК- вакцинами [83]. Sipuleucel-T представляет собой клеточный препарат из продуктов лейкафереза, в состав которого входят и ДК. Клетки нагружали гибридным белком, состоящим из полноразмер- ного ПКФ и полноразмерного человеческого ГМ- КСФ (ПКФ-ГМ-КСФ). В исследовании принимали участие пациенты с бессимптомным метастатиче- ским гормонорефрактерным раком предстатель- ной железы. На фоне применения такой вакцины у большинства пациентов наблюдали прогрессию заболевания. Тем не менее, Sipuleucel-T приводил к 1.2-кратному увеличению средней выживаемости (25.8 мес. против 21.7 мес. в группе плацебо), а так- же к развитию иммунологического ответа на ПКФ и Т-клеточного ответа типа Th1 [5, 83]. Вскоре после публикации этих результатов Sipuleucel-T был одо- брен Управлением по контролю качества продуктов и лекарств США (FDA USA) для лечения пациентов и коммерциализирован под названием Provenge® [86]. ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ДЕНДРИТНО-КЛЕТОЧНЫХ ВАКЦИН: ВОПРОСЫ И ОТВЕТЫ Из рассмотренных нами работ видно, что большин- ство противоопухолевых ДК-вакцин, прошедших к настоящему времени клинические исследования, обладают ограниченной эффективностью. Некоторые исследователи полагают, что низкая эффективность ДК-вакцин может быть связана с тем, что их влия- ние на выживаемость пациентов становится замет- ным лишь спустя некоторое время после проведе- ния лечения [5]. Однако главной причиной низкой эффективности ДК-вакцин, на наш взгляд, является сильное иммуносупрессорное действие опухоли, ко- торое реализуется с помощью множества механиз- мов. Например, опухоль и ее окружение способны ослаблять проникновение Т-лимфоцитов в места локализации опухоли, снижать активность гран- зима В и подавлять экспрессию рецептора смер- ти CD95 Т-лимфоцитами, а также индуцировать анергию активированных Т-лимфоцитов путем усиления экспрессии ингибиторных рецепторов CTLA-4 и PD-1, так называемых иммунологиче- ских чекпойнтов, на поверхности Т-лимфоцитов [87]. Иммуносупрессорное действие CTLA-4 заключается в конкуренции со стандартным участником иммуно- логического синапса CD28 за связывание с костиму- ляторными молекулами ДК CD80 (B7.1) и CD86 (B7.2) и передаче ингибиторного сигнала Т-лимфоцитам, что приводит к ослаблению ТКР/CD28 сигнально- го пути Т-лимфоцитов, снижению продукции ИЛ-2 Т-клетками и, в конечном итоге, к задержке клеточ- ного цикла [87, 88]. Рецептор PD-1 взаимодейству- ет с молекулами B7-H1, которые экспрессируются на поверхности опухолевых клеток, что также при- водит к нарушению ТКР/CD28 сигнального пути Т-лимфоцитов, индукции синтеза противовоспали- тельного цитокина ИЛ-10 и, в конце концов, к акти- вации иммуносупрессорных Трег и апоптозу опухо- леспецифических Т-лимфоцитов [87, 89]. Для усиления эффективности ДК-вакцин разумно использовать дополнительные методы, направлен- ные на снижение ингибирующего действия опухоли. Так, например, блокаторы CTLA-4, PD-1 и B7-H1 в комбинации с противоопухолевыми ДК-вакцинами позволят снизить иммуносупрессорное действие опу- холи, что может привести к значительному увели- чению противоопухолевой активности ДК-вакцин. На сегодняшний день известны такие блокаторы иммунологических чекпойнтов, как Ipilimumab [90] для CTLA-4, Nivolumab [91] и Pembrolizumab [92] для PD-1. Эти моноклональные антитела были не так давно одобрены FDA для иммунотерапии ме- тастатической меланомы [93, 94]. Блокаторы B7-H1 в настоящее время проходят клинические испыта- ния, но еще не получили разрешения на клиническое использование [95]. На сегодняшний день опублико- вана только одна работа, в которой противоопухо- левые ДК-вакцины применяли в сочетании с бло- каторами иммунологических чекпойнтов. В этом клиническом исследовании фазы II пациенты с ме- ланомой получали комбинацию Ipilimumab с ДК- вакцинами, нагруженными TriMix РНК и мРНК, кодирующими антигены, ассоциированные с мелано- мой. Были получены многообещающие результаты - после прохождения курса терапии полную ремиссию наблюдали у восьми из 39 пациентов и частичный от- вет - у семи [96]. Несомненно, что клинические ис- следования противоопухолевых ДК-вакцин в соче- тании с блокаторами иммунологических чекпойнтов не заставят себя долго ждать. ЗАКЛЮЧЕНИЕ Несмотря на разнообразные механизмы, которые опухоль использует для уклонения от иммунного от- вета, удалось получить многообещающие результаты иммунотерапии рака с помощью модифицированных ДК. На мышиных моделях наблюдали уменьшение скорости роста опухоли, сокращение количества ме- тастазов, увеличение выживаемости животных-опу- холеносителей, запуск опухолеспецифического от- вета ЦТЛ [50, 54, 57, 97, 98]. Результаты клинических испытаний противоопухолевых ДК-вакцин также были достаточно неплохими, однако менее впечат- ляющими по сравнению с полученными на мыши- ных моделях in vivo. Возможно, это связано с тем, что в большинстве случаев клинические испытания проводятся на больных, находящихся на терминаль- ных стадиях заболевания, когда любое лечение ма- лоэффективно. Кроме того, низкая эффективность ДК-вакцин может быть связана с более выраженным подавлением иммунной системы человека опухолью. Остались нерешенными проблемы поиска наибо- лее иммуногенного источника ОАГ, недостаточной специфичности и эффективности доставки ОАГ в ДК, что может сказываться на презентации процес- сированных ОАГ в комплексах с молекулами МНС I/ II на поверхности ДК и слабой поляризации противо- опухолевых иммунных ответов. Поэтому дальнейшая разработка противоопухолевых вакцин на основе ДК, способных преодолевать негативное действие опу- холи и ее окружения и инициировать эффективный противоопухолевый иммунный ответ, остается важ- ной задачей.
Об авторах
O. В. Марков
Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН
Автор, ответственный за переписку.
Email: markov_oleg@list.ru
Россия
Н. Л. Миронова
Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН
Email: mironova@niboch.nsc.ru
Россия
В. В. Власов
Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН
Email: markov_oleg@list.ru
Россия
М. А. Зенкова
Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН
Email: markov_oleg@list.ru
Россия
Список литературы
- Slingluff C.L.Jr., Petroni G.R., Yamshchikov G.V., Hibbitts S., Grosh W.W., Chianese-Bullock K.A., Bissonette E.A., Barnd D.L., Deacon D.H., Patterson J.W. // J. Clin. Oncol. 2004, V.22, P.4474-4485
- Terheyden P., Schrama D., Pedersen L.O., Andersen M.H., Kampgen E., Straten P., Becker J.C. // Scand. J. Immunol. 2003, V.58, P.566-571
- Rozkova D., Tiserova H., Fucikova J., Last’ovicka J., Podrazil M., Ulcova H., Budinsky V., Prausova J., Linke Z., Minarik I. // Clin. Immunol 2009, V.131, P.1-10
- Koh Y.T., Gray A., Higgins S.A., Hubby B., Kast W.M. // Prostate. 2009, V.69, P.571-584
- Kantoff P.W., Higano C.S., Shore N.D., Berger E.R., Small E.J., Penson D.F., Redfern C.H., Ferrari A.C., Dreicer R., Sims R.B. // N. Engl. J. Med. 2010, V.363, P.411-422
- Nestle F.O., Aligagic S., Gilliet M., Sun Y., Grabbe S., Dummer R., Burg G., Schadendorf D. // Nat. Med. 1998, V.4, P.328-332
- Fields R.C., Shimizu K., Mule J. // J. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998, V.95, P.9482-9487
- Geiger J., Hutchinson R., Hohenkirk L., McKenna E., Chang A., Mule J. // Lancet. 2000, V.356, P.1163-1165
- Geiger J.D., Hutchinson R.J., Hohenkirk L.F., McKenna E.A., Yanik G.A., Levine J.E., Chang A.E., Braun T.M., Mule J.J. // Cancer Research 2001, V.61, P.8513-8519
- Celluzzi C.M., Mayordomo J.I., Storkus W.J., Lotze M.T., Falo L.D. // J. Exp. Med. 1996, V.183, P.283-287
- Miconnet I., Coste I., Beermann F., Haeuw J.F., Cerottini J.C., Bonnefoy J.Y., Romero P., Renno T. // J. Immunol. 2001, V.166, P.4612-4619
- Wang H.Y., Fu T., Wang G., Zeng G., Perry-Laller D.M., Yang J.C., Restifo N.P., Hwu P., Wang R.F. // J. Clin. Invest. 2002, V.109, P.1463-1470
- van Gisbergen K., Aarnoudse C., Meijer G., Geijtenbeek T., van Kooyk Y. // Cancer Research 2005, V.65, P.5935-5944
- Curti A., Tosi P., Comoli P., Terragna C., Ferri E., Cellini C., Massaia M., D’Addio A., Giudice V., Di Bello C. // Br. J. Haematol. 2007, V.139, P.415-424
- Jarnjak-Jankovic S., Pettersen R.D., Saeboe-Larssen S., Wesenberg F., Olafsen M.R., Gaudernack G. // Cancer Gene Ther. 2005, V.12, P.699-707
- van Tandeloo V., Ponsaerts P., Lardon F., Nijis G., Lenjou M., van Broeckhoven C., van Bockstaele D.R., Berneman Z.N. // Blood. 2001, V.98, P.49-56
- Suso E.M., Dueland S., Rasmussen A.M., Vetrhus T., Aamdal S., Kvalheim G., Gaudernack G. // Cancer Immunol. Immunother. 2011, V.60, P.809-818
- Boczkowski D., Nair S.K., Nam J.H., Lyerly H.K., Gilboa E. // Cancer Research 2000, V.60, P.1028-1034
- Heiser A., Maurice M.A., Yancey D.R., Wu N.Z., Dahm P., Pruitt S.K., Boczkowski D., Nair S.K., Ballo M.S., Gilboa E. // J. Immunol. 2001, V.166, P.2953-2960
- Nair S.K., Boczkowski D., Morse M., Cumming R.I., Lyerly H.K., Gilboa E. // Nat. Biotechnol. 1998, V.16, P.364-369
- Nishioka Y., Hirao M., Robbins P.D., Lotze M.T., Tahara H. // Cancer Research 1999, V.59, P.4035-4041
- Rodriguez-Calvillo M., Duarte M., Tirapu I., Berraondo P., Mazzolini G., Qian C., Prieto J., Melero I. // Exp. Hematol. 2002, V.30, P.195-204
- Nakamura M., Iwahashi M., Nakamori M., Ueda K., Matsuura I., Noguchi K., Yamaue H. // Clin. Cancer Res. 2002, V.8, P.2742-2749
- Zhang W., He L., Yuan Z., Xie Z., Wang J., Hamada H., Cao X. // Hum. Gene Ther. 1999, V.10, P.1151-1161
- van Lint S., Renmans D., Broos K., Dewitte H., Lentacker I., Heirman C., Breckpot K., Thielemans K. // Expert Rev. Vaccines 2015, V.14, P.235-251
- Vari F., Hart D.N. // Cytotherapy. 2004, V.6, P.111-121
- Aarntzen E.H., Schreibelt G., Bol K., Lesterhuis W.J., Croockewit A.J., de Wilt J.H., van Rossum M.M., Blokx W.A., Jacobs J.F., Duiveman-de Boer T. // Clin. Cancer. Res. 2012, V.18, P.5460-5470
- Ibraheem D., Elaissari A., Fessi H. // Int. J. Pharm. 2014, V.459, P.70-83
- De Temmerman M.L., Dewitte H., Vandenbroucke R.E., Lucas B., Libert C., Demeester J., De Smedt S.C., Lentacker I., Rejman J. // Biomaterials. 2011, V.32, P.9128-9135
- Oda Y., Suzuki R., Otake S., Nishiie N., Hirata K., Koshima R., Nomura T., Utoguchi N., Kudo N., Tachibana K. // J. Control. Release. 2012, V.160, P.362-366
- Chen Y.Z., Yao X.L., Tabata Y., Nakagawa S., Gao J.Q. // Clin. Dev. Immunol. 2010, V.2010, P.565643
- Yang J., Liu H., Zhang X. // Biotechnol. Adv. 2014, V.32, P.804-817
- Reeves M.E., Royal R.E., Lam J.S., Rosenberg S.A., Hwu P. // Cancer Research 1996, V.56, P.5672-5677
- Nikitina E.Y., Clark J.I., van Beynen J., Chada S., Virmani A.K., Carbone D.P., Gabrilovich D.I. // Clin. Cancer Res. 2011, V.7, P.127-135
- Streitz J., Tormo D., Schweichel D., Tuting T. // Cancer Gene Ther. 2006, V.13, P.318-325
- Murakami T., Tokunaga N., Waku T., Gomi S., Kagawa S., Tanaka N., Fujiwara T. // Clin. Cancer Res. 2004, V.10, P.3771-3880
- Antonia S.J., Mirza N., Fricke I., Chiappori A., Thompson P., Williams N., Bepler G., Simon G., Janssen W., Lee J.H. // Clin. Cancer Res. 2006, V.12, P.878-887
- Morse M.A., Clay T.M., Hobeika A.C., Osada T., Khan S., Chui S., Niedzwiecki D., Panicali D., Schlom J., Lyerly H.K. // Clin. Cancer Res. 2005, V.11, P.3017-3024
- Perche F., Benvegnu T., Berchel M., Lebegue L., Pichon C., Jaffres P.A., Midoux P. // Nanomedicine. 2011, V.7, P.445-453
- Moffatt S., Cristiano R.J. // Int. J. Pharm. 2006, V.321, P.143-154
- Tang R., Palumbo R.N., Nagarajan L., Krogstad E., Wang C. // J. Control. Release. 2010, V.142, P.229-237
- Maslov M.A., Kabilova T.O., Petukhov I.A., Morozova N.G., Serebrennikova G.A., Vlassov V.V., Zenkova M.A. // J. Control. Release. 2012, V.160, P.182-193
- Markov O.V., Mironova N.L., Maslov M.A., Petukhov I.A., Morozova N.G., Vlassov V.V., Zenkova M.A. // J. Control. Release. 2012, V.160, P.200-210
- Markov O.V., Mironova N.L., Sennikov S.V., Vlassov V.V., Zenkova M.A. // PloS One. 2015, V.10, e0136911
- Markov O.V., Mironova N.L., Shmendel E.V., Serikov R.N., Morozova N.G., Maslov M.A., Vlassov V.V., Zenkova M.A. // J. Control. Release. 2015, V.213, P.45-56
- Morrison B.J., Steel J.C., Gregory M., Morris J.C., Malyguine A.M. // Dendritic Cells in Cancer / Eds Shurin M.R., Satler R.D. New York: Springer Science & Business Media, 2009, P.347-363
- Zarnani A.H., Torabi-Rahvar M., Bozorgmehr M., Zareie M., Mojtabavi N. // Cancer Res. Treat. 2015, V.47, P.518-526
- Kim H.S., Kim C.H., Park M.Y., Park J.S., Park H.M., Sohn H.J., Kim H.J., Kim S.G., Oh S.T., Kim T.G. // Immunol. Lett. 2010, V.131, P.73-80
- Yang Z., Wu D., Zhou D., Jiao F., Yang W., Huan Y. // Cell. Immunol. 2015, V.293, P.17-21
- Kim B.R., Yang E.K., Kim D.Y., Kim S.H., Moon D.C., Lee J.H., Kim H.J., Lee J.C. // Clin. Exp. Immunol. 2012, V.167, P.73-83
- Hira S.K., Mondal I., Manna P.P. // Cytotherapy. 2015, V.17, P.647-664
- Pandey V.K., Shankar B.S., Sanis K.B. // Int. Immunopharmacol. 2012, V.14, P.641-649
- Qiu L., Li J., Yu S., Wang Q., Li Y., Hu Z., Wu Q., Guo Z., Zhang J. // Oncotarget. 2015, V.6, P.5195-5203
- Zheng X., Koropatnick J., Chen D., Velenosi T., Ling H., Zhang X., Jiang N., Navarro B., Ichim T.E., Urquhart B. // Int. J. Cancer. 2013, V.132, P.967-977
- Cafri G., Sharbi-Yunger A., Tzehoval E., Alteber Z., Gross T., Vadai E., Margalit A., Gross G., Eisenbach L. // Molecular Therapy 2015, V.23, P.1391-1400
- Matheoud D., Perie L., Hoeffel G., Vimeux L., Parent I., Maranon C., Bourdoncle P., Renia L., Prevost-Blondel A., Lucas B. // Blood. 2010, V.115, P.4412-4420
- Matheoud D., Baey C., Vimeux L., Tempez A., Valente M., Louche P., Le Bon A., Hosmalin A., Feuillet V. // PloS One. 2011, V.6, e19104
- Xie J., Xiong L., Tao X., Li X., Su Y., Hou X., Shi H. // Lung Cancer. 2010, V.68, P.338-345
- Baek S., Lee S.J., Kim M.J., Lee H. // Immune Network. 2012, V.12, P.269-276
- Moon J.H., Chung M.K., Son Y.I. // Laryngoscope. 2012, V.122, P.2442-2446
- Van Tandeloo V.F., Ponsaerts P., Berneman Z.N. // Curr. Opin. Mol. Ther. 2007, V.9, P.423-431
- Su Z., Dannull J., Yang B.K., Dahm P., Coleman D., Yancey D., Sichi S., Niedzwiecki D., Boczkowski D., Gilboa E. // J. Immunol. 2005, V.174, P.3798-3807
- Heiser A., Coleman D., Dannull J., Yancey D., Maurice M.A., Dahm P., Niedzwiecki D., Gilboa E., Vieweg J. // J. Clin. Invest. 2002, V.109, P.409-417
- Mazzolini G., Alfaro C., Sangro B., Feijoo E., Ruitz J., Benito A., Tirapu I., Arina A., Sola J., Herraiz M. // J. Clin. Oncol. 2005, V.23, P.999-1010
- Mayanagi S., Kitago M., Sakurai T., Matsuda T., Fujita T., Higuchi H., Taguchi J., Takeuchi H., Itano O., Aiura K. // Cancer Sci. 2015, V.106, P.397-406
- Lepisto A.J., Moser A.J., Zeh H., Lee K., Bartlett D., McKolanis J.R., Geller B.A., Schmotzer A., Potter D.P., Whiteside T. // Cancer Ther. 2008, V.6, P.955-964
- Phuphanich S., Wheeler C.J., Rudnick J.D., Mazer M., Wang H., Nuno M.A., Richardson J.E., Fan X., Ji J., Chu R.M. // Cancer Immunol. Immunother. 2012, V.62, P.125-135
- Lesterhuis W.J., De Vries I.J., Schreibelt G., Schuurhuis D.H., Aarntzen E.H., De Boer A., Scharenborg N.M., Van De Rakt M., Hesselink E.J., Figdor C.G. // Anticancer Res. 2010, V.30, P.5091-5098
- Tada F., Abe M., Hirooka M., Ikeda Y., Hiasa Y., Lee Y., Jung N.C., Lee W.B., Lee H.S., Bae Y.S. // Int. J. Oncol. 2012, V.41, P.1601-1609
- Li Q.Y., Shi Y., Huang D.H., Yang T., Wang J.H., Yan G.H., Wang H.Y., Tang X.J., Xiao C.Y., Zhang W.J. // Int. J. Clin. Exp. Med. 2015, V.8, P.5601-5610
- Kitawaki T., Kadowaki N., Fukunaga K., Kasai Y., Maekawa T., Ohmori K., Itoh T., Shimizu A., Kuzushima K., Kondo T. // Exp. Hematol. 2011, V.39, P.424-433
- Suehiro Y., Hasegawa A., Iino T., Sasada A., Watanabe N., Matsuoka M., Takamori A., Tanosaki R., Utsunomiya A., Choi I. // Br. J. Haematol. 2015, V.169, P.356-367
- Palma M., Hansson L., Choudhury A., Nasman-Glaser B., Eriksson I., Adamson L., Rossmann E., Widen K., Horvath R., Kokhaei P. // Cancer Immunol. Immunother. 2012, V.61, P.865-879
- Himoudi N., Wallace R., Parsley K.L., Gilmour K., Barrie A.U., Howe K., Dong R., Sebire N.J., Michalski A., Thrasher A.J. // Clin. Transl. Oncol. 2012, V.14, P.271-279
- Chu C.S., Boyer J., Schullery D.S., Gimotty P.A., Gamerman V., Bender J., Levine B.L., Coukos G., Rubin S.C., Morgan M.A. // Cancer Immunol. Immunother. 2012, V.61, P.629-641
- Poschke I., Lovgren T., Adamson L., Nystrom M., Andersson E., Hansson J., Tell R., Masucci G.V., Kiessling R. // Cancer Immunol. Immunother. 2014, V.63, P.1061-1071
- Wilgenhof S., Corthals J., Van Nuffel A.M., Benteyn D., Heirman C., Bonehill A., Thielemans K., Neyns B. // Cancer Immunol. Immunother. 2015, V.64, P.381-388
- Escobar A., Lopez M., Serrano A., Ramirez M., Perez C., Aguirre A., Gonzalez R., Alfaro J., Larrondo M., Fodor M. // Clin. Exp. Immunol. 2005, V.142, P.555-568
- Oshita C., Takikawa M., Kume A., Miyata H., Ashizawa T., Iizuka A., Kiyohara Y., Yoshikawa S., Tanosaki R., Yamazaki N. // Oncol. Reports. 2012, V.28, P.1131-1138
- Ribas A., Camacho L.H., Lee S.M., Hersh E.M., Brown C.K., Richards J.M., Rodriguez M.J., Prieto V.G., Glaspy J.A., Oseguera D.K. // J. Transl. Med. 2010, V.8, P.89
- Kimura H., Matsui Y., Ishikawa A., Nakajima T., Yoshino M., Sakairi Y. // Cancer Immunol. Immunother. 2015, V.64, P.51-59
- Podrazil M., Horvath R., Becht E., Rozkova D., Bilkova P., Sochorova K., Hromadkova H., Kayserova J., Vavrova K., Lastovicka J. // Oncotarget. 2015, V.6, P.18192-18205
- Small E., Schellhammer P.F., Higano C.S., Redfern C.H., Nemunaitis J.J., Valone F.H., Verjee S.S., Jones L.A., Hershberg R.M. // J. Clin. Oncol. 2006, V.24, P.3089-3094
- Mahnke K., Schmitt E., Bonifaz L., Enk A.H., Jonuleit H. // Immunol. Cell Biol. 2002, V.80, P.477-483
- Vinay D.S., Ryan E.P., Pawelec G., Talib W.H., Stagg J., Elkord E., Lichtor T., Decker W.K., Whelan R.L., Kumara H.M. // Semin. Cancer Biol. 2015, V.35, P.S185-S198
- Galluzzi L., Senovilla L., Vacchelli E., Eggermont A., Fridman W.H., Galon J., Sautes-Fridman C., Tartour E., Zitvogel L., Kroemer G. // Oncoimmunology. 2012, V.1, P.1111-1134
- Topfer K., Kempe S., Muller N., Schmitz M., Bachmann M., Cartellieri M., Schackert G., Temme A. // J. Biomed. Biotechnol. 2011, V.2011, P.918471
- Walunas T.L., Lenschow D.J., Bakker C.Y., Linsley P.S., Freeman G.J., Green J.M., Thompson C.B., Bluestone J.A. // Immunity. 1994, V.1, P.405-413
- Fife B.T., Pauken K.E. // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2011, V.1217, P.45-59
- Starz H. // Expert Opin. Biol. Ther. 2012, V.12, P.981-982
- Sundar R., Cho B.C., Brahmer J.R., Soo R.A. // Ther. Adv. Med. Oncol. 2015, V.7, P.85-96
- Dang T.O., Ogunniyi A., Barbee M.S., Drilon A. // Expert Rev. Anticancer. Ther. 2015, V.10, P.1-8
- Chmielowski B. // J. Skin Cancer. 2013, V.2013, P.423829
- Ivashko I.N., Kolesar J.M. // Am. J. Hlth. Syst. Pharm. 2016, V.73, P.193-201
- Boyerinas B., Jochems C., Fantini M., Heery C.R., Gulley J.L., Tsang K.Y., Schlom J. // Cancer Immunol. Res. 2015, V.3, P.1148-1157
- Wilgenhof S., Corthals J., Heirman C., van Baren N., Lucas S., Kvistborg P., Thielemans K., Neyns B. // J. Clin. Oncol. 2016, V.34, P.1330-1338
- Koido S., Kashiwaba M., Chen D., Gendler S., Kufe D., Gong J. // J. Immunol. 2000, V.165, P.5713-5719
- Yang B.B., Jiang H., Chen J., Zhang X., Ye J.J., Cao J. // Head Neck. 2010, V.32, P.626-635