Отправить статью по E-mail Липополисахарид Rhodobacter capsulatus PG – потенциальный блокатор активации Тоll-подобных рецепторов 2 и 4
- Авторы: Зубова С.В.1, Радзюкевич Я.В.1, Косякова Н.И.2, Прохоренко И.Р.1
-
Учреждения:
- ФИЦ ПНЦБИ РАН
- Больница Пущинского научного центра РАН
- Выпуск: Том 17, № 1 (2025)
- Страницы: 106-109
- Раздел: Краткие сообщения
- Дата подачи: 06.11.2024
- Дата принятия к публикации: 28.01.2025
- Дата публикации: 22.04.2025
- URL: https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/27555
- DOI: https://doi.org/10.32607/actanaturae.27555
- ID: 27555
Цитировать
Полный текст
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
KDO – 3-дезокси-d-манно-октулозоновая кислота; LPS – липополисахарид; LTA – липотейхоевая кислота; IL – интерлейкин; MD-2 – белок миелоидной дифференцировки 2; Pam3CSK4 – синтетический триацилированный липопептид; РАМР – патогенраспознающие молекулярные паттерны; TLR – Тоll-подобный рецептор; TNF-α – фактор некроза опухоли α.
ВВЕДЕНИЕ
Распознавание патогена клетками крови является наиболее важным шагом в развитии адекватного иммунного ответа на инфекцию. TLR2 и TLR4 играют ключевую роль при воспалении благодаря способности идентифицировать определенные консервативные молекулярные структуры вторгшихся патогенов (PAMP) [1]. Эти рецепторы также формируют и связывают врожденные и адаптивные иммунные реакции. Изучение механизмов функциональных ответов клеток врожденного иммунитета на PAMP различной природы важно для разработки эффективных способов противодействия бактериальным и вирусным инфекциям. TLR4 является специфическим рецептором LPS, основного компонента клеточной стенки грамотрицательных бактерий [2]. Лигандная специфичность TLR2 контролируется их гетеродимеризацией с TLR1 или TLR6. Триацилированные липопептиды вызывают гетеродимеризацию TLR2 с TLR1, а в ответ на диацилированные липопептиды TLR2 взаимодействует с TLR6 и CD36 [3]. Из трех липидных цепей триацилированного лиганда (в частности, Pam3CSK4) две взаимодействуют с TLR2, тогда как третья цепь занимает гидрофобный канал TLR1 [4]. Поскольку в молекуле TLR6 гидрофобный канал отсутствует, гетеродимер TLR2/TLR6 не может распознавать триацилированные липопептиды [5]. Способность TLR2 кооперироваться либо с TLR1, либо с TLR6 приводит к взаимодействию клеток крови с более широким спектром микробных продуктов, увеличивает продукцию провоспалительных цитокинов и осложняет патогенез сепсиса.
LPS фототрофной бактерии штамма Rhodobacter capsulatus PG, обладающий собственной низкой эндотоксической активностью, является антагонистом эндотоксинов [6]. Синтетический аналог липида А R. capsulatus, препарат E5531, способен блокировать иммунобиологическую активность LPS и LTA [7].
Задача настоящей работы состояла в изучении способности LPS R. capsulatus PG блокировать активацию клеток врожденного иммунитета лигандами TLR2 и TLR4 разной природы.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Исследования проведены на цельной крови условно здоровых добровольцев в возрасте от 25 до 30 лет. Все испытуемые дали письменное согласие на участие в исследовании. Протокол исследования соответствует Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации (2013 г.) и одобрен Локальным этическим комитетом больницы Пущинского научного центра (№ 2 от 10.04.2014). Забор периферической крови осуществляли в клинических условиях с использованием вакутейнеров (Becton Dickinson and Company, Великобритания), обработанных гепарином натрия (17 ед./мл).
Активация клеток крови LPS, LTA или Pam3CSK4
Для изучения влияния LPS, LTA и Pam3CSK4 на синтез цитокинов цельную кровь разводили средой RPMI 1640 в соотношении 1 : 10 и инкубировали с LPS E. coli О55:B5 (100 нг/мл), LTA Streptococcus pyogenes (1000 нг/мл), синтетическим липопептидом Pam3CSK4 (300 нг/мл) (Sigma-Aldrich, США) или LPS R. capsulatus PG (1000 нг/мл) в различных сочетаниях в течение 6 ч при 37°C и 5% CO2. LPS R. capsulatus PG получен согласно методике, описанной ранее [8]. Для определения антагонистического действия LPS R. capsulatus PG в отношении агонистов кровь предварительно инкубировали в течение 30 мин с LPS R. capsulatus PG, после чего добавляли LPS, LTA или Pam3CSK4. После инкубации клетки крови осаждали центрифугированием (300 g, 10 мин). Супернатанты отбирали и хранили при –20°C до определения содержания цитокинов.
Содержание цитокинов
Содержание цитокинов определяли с помощью наборов для ИФА TNF-α, IL-6, IL-8 («Вектор-БЕСТ», Россия) согласно протоколу производителя. Оптическую плотность образцов определяли на ИФА-анализаторе STAT FAX 3200 (Awareness Technology Inc., США) при длине волны 450 нм.
Статистический анализ
Статистическую обработку и графическое представление результатов проводили методами непараметрической статистики в Origin Pro 7.5 и Microsoft Office Excel 2010 (плагин AtteStat). Результаты представлены в виде медианных значений с верхним и нижним квартилями (IQR). Статистическую значимость различий между медианными значениями определяли по критерию Манна–Уитни (p < 0.05).
РЕЗУЛЬТАТЫ
Важнейшим звеном в цепочке активации синтеза цитокинов являются специфические рецепторы TLR2 и TLR4, обеспечивающие адекватный иммунный ответ на различные патогены. На клетках цельной крови человека в единой серии экспериментов исследовали активацию синтеза цитокинов TNF-α, IL-6 и хемокина IL-8 посредством лигандов TLR2 и TLR4: LPS E. coli, LTA S. pyogenes или Pam3CSK4. Активирующие лиганды стимулировали выработку TNF-α, IL-6 и IL-8 клетками крови, достоверно превышающую контрольные значения (рис. 1).
Рис. 1. Влияние LPS R. capsulatus PG на синтез TNF-α, IL-8 и IL-6 при активации клеток цельной крови LPS E. coli, LTA S. pyogenes или Pam3CSK4, n = 7. *p < 0.05
В ответ на активацию LTA S. pyogenes наблюдалось повышение синтеза TNF-α и IL-8, концентрации которых были выше, чем при воздействии LPS E. coli или Pam3CSK4. Иными словами, количество синтезируемых клетками цитокинов снижалось в ряду LTA S. pyogenes > LPS E. coli > Pam3CSK4. LPS R. capsulatus PG в концентрации, превышающей концентрацию эндотоксина E. coli в 10 раз, Pam3CSK4 в 3 раза и в равной концентрации с LTA S. pyogenes не стимулировал выработку TNF-α в клетках (рис. 1).
Содержание IL-8 и IL-6 в крови в ответ на LPS R. capsulatus PG незначительно увеличивалось по сравнению с контролем, но было значительно ниже, чем при активации клеток крови другими лигандами.
Изучение способности LPS R. capsulatus PG защищать от действия LPS E. coli, LTA S. pyogenes и Pam3CSK4 показало, что LPS R. capsulatus PG подавляет синтез TNF-α и IL-6 в крови, причем блокирование ответа снижалось в ряду LTA S. pyogenes > LPS E. coli > Pam3CSK4, как и при активации клеток крови исследованными лигандами. LPS R. capsulatus PG не защищал клетки крови от активации синтеза IL-8 посредством LPS E. coli, в отличие от активации посредством LTA S. pyogenes и Pam3CSK4. В этом случае защитный эффект LPS R. capsulatus PG был значительным.
ОБСУЖДЕНИЕ
В представленной работе изучали потенциальную антагонистическую активность LPS непатогенной бактерии R. capsulatus PG не только в отношении LPS грамотрицательной бактерии E. coli – типичного агониста TLR4, но также ди- или триацилированных липопептидов – LTA грамположительной бактерии S. рyogenes и синтетического аналога триацилированных липопептидов, Pam3CSK4.
Эндотоксическая активность LPS зависит от структуры липида А. Наиболее значимый фактор, определяющий связь между структурой липида А и токсичностью LPS, количество жирных цепей. Ранее было показано, что Е5531, синтетический аналог липида А фототрофной бактерии R. capsulatus 37b4, блокирует иммунобиологическую активность LPS E. coli и LTA Staphylococcus faecalis [7]. В отличие от Е5531, LPS R. capsulatus PG содержит не только атипичный липид А с пятью укороченными жирными кислотами, в том числе одной ненасыщенной, но и включает в свою структуру 3-дезокси-d-манно-октулозоновую кислоту (KDO), внешний кор и О-антиген. Установлено, что внутренний кор LPS влияет не только на биологическую активность, но также на взаимодействие с белком MD-2 и TLR4 [9]. Для распознавания LPS TLR4 образует димер с мембранным белком MD-2, который связывается с LPS, образуя комплекс, способный активировать TLR4-положительные клетки [2]. Показано, что липид А R. sphaeroides полностью заполняет гидрофобный карман MD-2, формируя комплекс MD-2/липид А, который удерживается главным образом за счет гидрофобного взаимодействия между хвостами липида A и аминокислотами полости связывания MD-2. Tyr102 может отвечать за антагонистическую активность этого липида А из-за его перевернутого встраивания в комплексе MD-2/липид A [10]. MD-2 также участвует в TLR2-опосредованных ответах клеток крови на компоненты клеточной стенки грамположительных бактерий. MD-2 связывается с TLR2, но эта связь слабее, чем с TLR4 [11].
Для распознавания три- или диацилированных липопептидов TLR2 образует рецепторные гетеродимеры с TLR1 или с TLR6 [12]. Известно, что атипичные LPS Legionella pneumophila или Rhizobium spp. индуцируют воспалительные ответы скорее через TLR2, чем через TLR4 [13]. В нашей работе установлено, что LPS R. capsulatus PG блокирует активацию синтеза цитокинов в клетках крови агонистами не только TLR4, но также TLR2/6 и TLR2/1. Это указывает на то, что из-за особенностей состава и структуры липида А LPS R. capsulatus PG может связываться не только с TLR4, но и с TLR2. По-видимому, в противоположность классическим агонистам, структура липида А R. capsulatus PG не стимулирует образование гомодимера (TLR4)2 или комплексов TLR2/TLR1 и TLR2/TLR6, необходимых для активации клеток с последующим синтезом провоспалительных цитокинов. Возможно, LPS R. сapsulatus образует комплекс TLR2/MD-2/LPSRb, блокирующий формирование гетерокомплексов TLR2/6 или TLR2/1 и последующую TLR2-опосредованную активацию клеток посредством LTA или Pam3CSK4 с повышением синтеза цитокинов TNF-α, IL-6 и IL-8.
В связи с тем, что LPS R. capsulatus PG блокирует активацию TLR4 и TLR2, нельзя исключить механизм его антагонистической активности, предложенный для LPS Ochrobactrum intermedium [14]. Этот низкотоксичный атипичный LPS при активации клеток крови индуцирует взаимодействие рецепторов TLR4 и TLR2 и образование гетеродимера TLR4/TLR2. Бактерии R. сapsulatus PG и O. intermedium относятся к α-подгруппе Proteobacteria [15]. LPS обеих бактерий обладают низкой эндотоксической активностью. В состав LPS этих бактерий входят липиды А, содержащие ненасыщенный жирнокислотный остаток, внутренний кор, внешний кор и О-антиген. Показано также, что сахара кора также участвуют в формировании низкоактивного комплекса TLR2/TLR4/MD-2 при ответе на LPS O. intermedium [14]. Нельзя исключить, что взятый в избытке LPS R. сapsulatus PG также индуцирует формирование низкоактивного комплекса TLR4/MD-2/TLR2, который блокирует последующий синтез TNF-α, IL-6 и IL-8 в ответ на LPS E. coli, LTA S. pyogenes или Pam3CSK4.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Из полученных результатов следует, что LPS R. capsulatus PG проявляет антагонистическую активность в отношении не только лигандов TLR4, но и лигандов TLR2 разной структуры, таких как три- и диацилированные липопептиды. Предложены возможные механизмы блокирующего действия LPS R. capsulatus PG в отношении активации TLR2 и TLR4.
LPS R. capsulatus PG может служить прототипом препаратов, защищающих как от грамотрицательных, так и от грамположительных бактерий.
Авторы выражают благодарность Больнице Пущинского научного центра РАН за сотрудничество.
Работа выполнена в рамках Госзадания 1023033100509-9-1.6.7 и 122041200039-0, созданного Министерством науки и высшего образования Российской Федерации на базе Института биологического приборостроения и Института фундаментальных проблем биологии РАН ФИЦ ПНЦБИ РАН.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Дополнительные файлы
