Уникальный прототип радиотерапевтической установки: р53-независимый антипролиферативный эффект нейтронного облучения
- Авторы: Юрков Д.И.1, Сыромуков С.В.1, Татарский В.В.2,3, Иванова Е.С.2, Хамидуллина А.И.3, Ястребова М.А.3, Сысоев В.И.1, Добров Р.В.1, Белоусов А.В.4,5, Морозов В.Н.1,4, Колыванова М.А.4, Крусанов Г.А.4,6, Зверев В.И.1, Штиль А.А.2,3
-
Учреждения:
- Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова
- Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Минздрава России
- Институт биологии гена РАН
- Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России
- Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
- НИИ ядерной физики им. Д.В. Скобельцина при Московском государственном университете им. М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 11, № 3 (2019)
- Страницы: 99-102
- Раздел: Краткие сообщения
- Дата подачи: 21.01.2020
- Дата публикации: 15.09.2019
- URL: https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/10859
- DOI: https://doi.org/10.32607/20758251-2019-11-3-99-102
- ID: 10859
Цитировать
Аннотация
Лучевая терапия с использованием тяжелых частиц (в частности, нейтронов) предусматривает создание нового оборудования. Для замены применяемых в настоящее время ядерных реакторов, циклотронов и линейных ускорителей сконструирован компактный, переносной и мощный генератор нейтронов НГ-24 (вес 140 кг, размеры 42 × 110 см, мощность потока частиц 1011 н/с, энергия ~ 14 МэВ). Облучение нейтронами, генерируемыми НГ-24, вызывало выраженный антипролиферативный эффект на культурах опухолевых клеток человека независимо от статуса проапоптотического белка р53. Фосфорилирование гистона 2A и увеличение количества белков p21, циклина D и фосфорилированного p53 выявлены в клетках линии HCT116 рака толстой кишки (интактный p53), облученных в дозе 4 Гр. Облучение приводило к задержке клеточного цикла в фазе G2/M. Способность клеток к колониеобразованию существенно снижалась. В сублинии HCT116p53KO (нокаут p53) задержка в G2/M оказалась не связанной с указанными молекулярными событиями. Таким образом, НГ-24 - прототип клинически приемлемого источника высокоэнергетических нейтронов, вызывающих противоопухолевые эффекты в терапевтических дозах.
Ключевые слова
Полный текст
ВВЕДЕНИЕ В традиционной лучевой терапии опухолей используются источники фотонов с энергией 30 кэВ-25 МэВ. Однако по эффективности фотоны уступают тяжелым частицам, в частности, нейтронам с энергией > 1 МэВ («быстрые» нейтроны). Благодаря высоким значениям линейной передачи энергии и относительной биологической эффективности (ОБЭ) быстрые нейтроны имеют преимущество перед фотонами в терапии радиорезистентных опухолей [1]. Несмотря на терапевтическую перспективность, клиническое применение нейтронов ограничено, в том числе из-за особенностей приборного обеспечения. Используемые в международной практике циклотроны, ядерные реакторы и линейные ускорители [1, 2] представляют собой громоздкие, сложные в управлении и обслуживании стационарные устройства. Альтернативным подходом может быть использование малогабаритных источников быстрых нейтронов. Генератор НГ-24, разработанный во ВНИИА им. Н.Л. Духова - компактное, переносное и безопасное устройство с достаточной терапевтической мощностью [3]. Технические параметры НГ-24 представлены в таблице. Небольшие габариты НГ-24 позволяют поместить его как на гантри, так и на роботизированном манипуляторе. Источником нейтронов в НГ-24 является насыщенная тритием мишень, на которую направляется пучок ионов дейтерия, ускоренных в электрическом поле. В результате ядерной реакции 3H(d,n)4He генерируются нейтроны с энергиями 14-15 МэВ. При широком сечении реакции (5 барн при 107 кэВ) может быть получен поток > 1011 нейтронов/с. [4, 5]. Теоретические расчеты и эксперименты показали близкую к линейной зависимость энергии нейтронов (14.71-14.87 МэВ) от ускоряющего напряжения [6, 7]. Параметры НГ-24 Поток, нейтронов/c ~ 1×1011 Энергия нейтронов, МэВ >14 Ресурсное время, ч 500 Размеры, мм 420 × 1100 Масса, кг 140 Электрическое питание, мощность 50/60 Гц, 220 В, 1200 Вт В настоящей работе исследована способность нейтронного пучка, генерируемого НГ-24, вызывать терапевтически важные эффекты на моделях культивируемых опухолевых клеток человека. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ Поглощенную дозу в монослое клеток оценивали по потоку частиц методом компьютерного моделирования в программном коде Geant4 [8] (Physicslist QGSP_BIC_HP для нейтронов с энергией < 20 МэВ). Рассчитанный коэффициент конверсии потока частиц в дозу, поглощенную слоем опухолевых клеток, равен 5.7 × 10-13 Гр/нейтрон. Негомогенность потока нейтронов в монослое клеток не превышала ±15%. Реактивы получены в компании «ПанЭко» (Россия), кроме особо оговоренных случаев. Линии клеток рака толстой кишки HCT116 (интактный р53) и молочной железы MCF7 (делеция каспазы 3) человека получены из Американской коллекции тканевых культур. Сублиния HCT116p53KO с нефункционирующим белком р53 получена в лаборатории Б. Фогелстайна [9]. Клетки (50% монослоя) в 25 см2 флаконах облучали 14 МэВ нейтронами. Для колониеобразования 1000 облученных и необлученных (контроль) клеток рассевали на 100-мм чашку Петри в 20 мл модифицированной Дульбекко среды Игла с добавлением 10% эмбриональной сыворотки теленка (HyClone, США), 2 мМ L-глутамина, 100 ЕД/мл пенициллина и 100 мкг/мл стрептомицина, инкубировали в течение 14 сут при 37°С, 5% СО2. Колонии фиксировали метанолом и окрашивали метиловым фиолетовым. Для проточной цитофлуориметрии и иммуноблотинга облученные клетки инкубировали в указанной среде в течение 1-4 сут. Протоколы исследования клеточного цикла и белков опубликованы нами ранее [10-12]. Антитела приобретены в компании Cell Signaling (США). РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ Однократное облучение линии НСТ116 в дозе 2 Гр значительно снижало способность клеток к пролиферации; после подведения дозы 3 Гр насчитывали лишь единичные мелкие (≤ 6 клеток) колонии (рисунок A). Через 2 сут после облучения клетки накапливались в фазе G2/M. Эта задержка сохранялась не менее 4 сут (рисунок Б; отметим увеличение доли полиплоидных клеток - признак нарушения митоза). Полученные результаты указывают на повреждение целостности ДНК как основной механизм ответа клеток на облучение нейтронами, генерируемыми НГ-24. Действительно, через 4 ч доля клеток с фосфорилированным гистоном Н2А - маркером разрывов ДНК - возрастала с 10% в интактных клетках до > 70% в клетках, получивших дозу 4 Гр. Этот эффект сохранялся не менее 24 ч после воздействия нейтронов. Важно, что эффекты нейтронного облучения, выявленные на линии НСТ116, воспроизводятся на изогенной сублинии HCT116p53KO. Эта сублиния с инактивированным проапоптотическим белком р53 устойчива к ряду ДНК-повреждающих противоопухолевых препаратов [10]. Следовательно, p53 не обязателен для антипролиферативного действия нейтронов. Описанные эффекты наблюдали и для линии рака молочной железы MCF7 (делеция каспазы 3). Таким образом, противоопухолевые эффекты нейтронного облучения выявляются в клетках разного тканевого происхождения; отдельные нефункционирующие механизмы гибели, в других ситуациях ограничивающие терапевтическую эффективность, не препятствуют реализации противоопухолевого действия нейтронов. Несмотря на схожесть ответа на облучение нейтронами, молекулярные события в клетках с интактным и нефункционирующим р53 не одинаковы. Так, накопление белка р21, тормозящего смену фаз клеточного цикла в ответ на повреждение ДНК, а также активация циклина D1 - драйвера перехода G1-S - выявлены только в клетках HCT116, но не в сублинии HCT116p53KO (4 Гр; рисунок В). Поэтому увеличение p53, p21 и циклина D1 приводило к задержке клеток HCT116 в фазе G2/M, тогда как при нефункционирующем р53 такое же нарушение клеточного цикла обусловлено другими механизмами. Предстоит установить эти механизмы, а также выявить окончательный результат нейтронного облучения - апоптоз, митотическая катастрофа, старение и др. Таким образом, генератор НГ-24 создает поток нейтронов, достаточный для индукции молекулярных и фенотипических нарушений в дозах и интервалах времени, соответствующих принятым в лучевой терапии, что позволяет предполагать пригодность установки для терапевтических задач. В то же время нейтронное излучение требует особых подходов к обеспечению безопасности пациента. Важнейшим является вопрос о повреждении нейтронами неопухолевых клеток. Учитывая зависимость противоопухолевой эффективности от параметров облучения, недостаточность информации о биологических закономерностях действия нейтронов, а также сложность точного определения поглощенной дозы нейтронного излучения, построение корреляций на основании сравнения ответа линий опухолевых и неопухолевых клеток представляется малопродуктивным. Экспериментальное исследование осложняется невозможностью образования колоний нетрансформированными клетками и трудностями длительного культивирования, что требует систематического исследования. Конформность нейтронного облучения обеспечивается техническими решениями. Современные аппараты для лучевой терапии позволяют существенно снизить или избежать повреждения окружающих тканей благодаря широким возможностям планирования облучения - расчетам дозовой нагрузки на опухоль и перифокальные ткани. Поскольку доза на поверхности выше, чем в опухоли (поглощенная доза уменьшается вдвое на глубине 5-6 см), в лучевой терапии используется многопольное облучение; накопление дозы в опухоли происходит при облучении под различными углами к телу пациента. Удается снизить удельную дозу на поверхности при сохранении терапевтически эффективной дозы в опухоли. Используются мультилепестковые коллиматоры, точно повторяющие форму опухоли. Во время вращения источника вокруг тела пациента лепестки коллиматора перемещаются и формируют поле для каждого угла облучения; таких позиций во время сеанса лучевой терапии может быть много. Кроме того, значения ОБЭ нейтронов увеличиваются по мере уменьшения их энергии. В толще тканей, где нейтроны замедляются, ОБЭ ожидается выше, чем на коже. Однако, учитывая сложность определения ОБЭ, этот вопрос представляется недостаточно определенным. Для его решения требуются испытания in vivo. В настоящем сообщении показано, что физико-технические параметры экспериментальной установки НГ-24 обеспечивают поток нейтронов с биологическими характеристиками, приемлемыми для противоопухолевой радиотерапии. Следующая приоритетная задача - создание терапевтического прототипа, сочетающего высокую противоопухолевую эффективность нейтронов, конформность облучения и выполнение требований безопасности пациентов и персонала. ВЫВОДЫ Безопасное компактное устройство НГ-24 генерирует поток быстрых нейтронов, что позволяет подвести дозу облучения, достаточную для индукции выраженного антипролиферативного ответа в культуре опухолевых клеток. Повреждение целостности ДНК и задержка смены фаз клеточного цикла в ответ на нейтронное облучение выражены независимо от статуса проапоптотического белка р53. Этот результат предполагает эффективность быстрых нейтронов для элиминации опухолевых клеток, в которых не функционируют отдельные молекулярные механизмы контроля баланса выживания и гибели.
Об авторах
Д. И. Юрков
Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова
Автор, ответственный за переписку.
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
С. В. Сыромуков
Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
В. В. Татарский
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Минздрава России; Институт биологии гена РАН
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
Е. С. Иванова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Минздрава России
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
А. И. Хамидуллина
Институт биологии гена РАН
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
М. А. Ястребова
Институт биологии гена РАН
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
В. И. Сысоев
Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
Р. В. Добров
Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
А. В. Белоусов
Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
В. Н. Морозов
Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова; Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
М. А. Колыванова
Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
Г. А. Крусанов
Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна ФМБА России; НИИ ядерной физики им. Д.В. Скобельцина при Московском государственном университете им. М.В. Ломоносова
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
В. И. Зверев
Всероссийский научно-исследовательский институт автоматики им. Н.Л. Духова
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
А. А. Штиль
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина Минздрава России; Институт биологии гена РАН
Email: shtilaa@yahoo.com
Россия
Список литературы
- Specht H.M., Neff T., Reuschel W., Wagner F.M., Kampfer S., Wilkens J.J., Petry W., Combs S.E. // Front. Oncol. 2015. V. 5. P. 262.
- Valcović V. 14 MeV neutrons: Physics and applications. Boca Raton: CRC Press, Taylor and Francis Group, 2015. 516 p.
- Syromukov S.V., Stepnov V.V. Generator neytronov. - Poleznaya model’ dlya patenta RF №166092 ot 03.06.2016
- Syromukov S.V., Stepnov V.V., Dobrov R.V., Sysoev V.I., Mel’nik A.V., Bogatikov K.V., Starostin A.N., Letichevskii R.D. // Atomic Energy. 2015. V. 119. P. 68-71.
- Sevast’yanov V.D., Kovalenko O.I., Orlov A.V., Shibaev R.M., Obudovskii S.Yu., Portnov B.D., Batyunin A.V., Kashchuk Yu.A. // Measur. Tech. 2016. V. 59. P. 994-1001.
- Syromukov S.V. // Atomic Energy. 2018. V. 123. P. 267-274.
- Lityaev V.M., Ulyanenko S.E., Koryakin S.N., Brovin A.I., Syromukov S.V., Bogolyubov E.P., Ryzhova V.I., Gorbushin N.G. Apparat dlya distancionnoy neytronnoy terapii. - Patent RF №2526244 ot 28.08.2013
- Agostinelli S., Allison J., Amako K., Apostolakis J., Araujo H., Arce P., Asai M., Axen D., Banerjee S., Barrand G., et al. // Nucl. Instrum. Meth. Phys. Res. Section A. 2003. V. 506. P. 250-303.
- Bunz F., Dutriaux A., Lengauer C., Waldman T., Zhou S., Brown J.P., Sedivy J.M., Kinzler K.W., Vogelstein B. // Science. 1998. V. 282. P. 1497-1501.
- Tikhomirov A.S., Lin C.Y., Volodina Y.L., Dezhenkova L.G., Tatarskiy V.V., Schols D., Shtil A.A., Kaur P., Chueh P.J., Shchekotikhin A.E. // Eur. J. Med. Chem. 2018. V. 148. P. 128-139.
- Nadysev G.Y., Tikhomirov A.S., Lin M.-H., Yang Y.-T., Dezhenkova L.G., Chen H.-Y., Kaluzhny D.N., Schols D., Shtil A.A., Shchekotikhin A.E., et al. // Eur. J. Med. Chem. 2018. V. 143. P. 1553-1562.
- Volodina Y.L., Dezhenkova L.G., Tikhomirov A.S., Tatarskiy V.V., Kaluzhny D.N., Moisenovich A.M., Moisenovich M.M., Isagulieva A.K., Shtil A.A., Tsvetkov V.B., et al. // Eur. J. Med. Chem. 2019. V. 165. P. 31-45.