Влияние 3D-условий культивирования на дифференцировку энтодермальных клеток
- Авторы: Петракова O.С.1,2, Ашапкин В.В.3,4, Воротеляк E.A.1, Брагин E.Ю.4, Штратникова В.Ю.4, Черниогло E.С.1, Суханов Ю.В.1, Терских В.В.1, Васильев A.В.1
-
Учреждения:
- Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН
- Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
- Научно-исследовательский институт физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова
- Инновационно-технологический центр «Биологически активные соединения и их применение» РАН
- Выпуск: Том 4, № 4 (2012)
- Страницы: 47-57
- Раздел: Экспериментальные статьи
- Дата подачи: 17.01.2020
- Дата публикации: 15.12.2012
- URL: https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/10613
- DOI: https://doi.org/10.32607/20758251-2012-4-4-47-57
- ID: 10613
Цитировать
Аннотация
Клеточная терапия органов энтодермального происхождения представляет собой одну из важных задач современной клеточной биологии и биотехнологии. Наиболее перспективным направлением в этой области является изучение возможностей трансдифференцировки клеток в пределах одного зародышевого листка. На примере анализа дифференцировочного потенциала энтодермальных протоковых клеток слюнной железы мыши в коллагеновом геле рассматривается один из подходов к изучению пластичности клеточного фенотипа in vitro - культивирование клеток в трехмерном матриксе (3D). Получены культуры постнатальных клеток подчелюстной слюнной железы и постнатальных прогениторных клеток печени мыши и проведена их сравнительная характеристика в 2D- и 3D-условиях культивирования. Показано, что оба типа клеток активно пролиферируют в 2D-условиях и проходят более 20 пассажей. В 2D-условиях культивирования клетки находятся в малодифференцированном состоянии. При переходе в 3D-условия клетки подвергаются дифференцировке, о чем свидетельствует замедление их пролиферации и увеличение экспрессии дифференцировочных маркеров. Клетки слюнной железы способны к трансдифференцировке в гепатоцитарном и панкреатическом направлениях. При культивировании в коллагеновом геле для клеток слюнной железы характерно снижение экспрессии протоковых маркеров и увеличение экспрессии гепатоцитарных маркеров. Прогениторные клетки печени при культивировании в 3D-условиях также приобретают способность к дифференцировке в панкреатическом направлении. Таким образом, постнатальные клетки слюнной железы проявляют значительную фенотипическую пластичность в пределах энтодермального зародышевого листка, они могут служить перспективным источником энтодермальных клеток для заместительной клеточной терапии заболеваний печени. Культивирование клеток в 3D-условиях является удобной моделью in vitro-анализа дифференцировочного потенциала клеток.
Об авторах
O. С. Петракова
Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН; Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова
Автор, ответственный за переписку.
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
В. В. Ашапкин
Научно-исследовательский институт физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского Московского государственного университета им. М.В. Ломоносова; Инновационно-технологический центр «Биологически активные соединения и их применение» РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
E. A. Воротеляк
Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
E. Ю. Брагин
Инновационно-технологический центр «Биологически активные соединения и их применение» РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
В. Ю. Штратникова
Инновационно-технологический центр «Биологически активные соединения и их применение» РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
E. С. Черниогло
Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
Ю. В. Суханов
Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
В. В. Терских
Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
A. В. Васильев
Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН
Email: PetrakovaOl@yandex.ru
Россия
Список литературы
- Uryvaeva I.V. Stem cells in liver regeneration. The stem cells biology and cellular technologies. M.: Medicine, 2009. V. 2. 456 P.
- Zaret, K.S. // Nat. Rev. Genet. 2008. V. 9. P. 329-340.
- Rambhatla L., Chiu C.P., Kundu P., Peng Y., Carpenter M.K. // Cell Transplant. 2003. V. 12. № 1. P. 1-11.
- Hay D.C., Fletcher J., Payne C., Terrace J.D., Gallagher R.C., Snoeys J., Black J.R., Wojtacha D., Samuel K., Hannoun Z., et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008. V. 26. № 105. P. 12301-12306.
- Soto-Gutierrez A., Navarro-Alvarez N., Caballero-Corbalan J., Tanaka N., Kobayashi N. // Acta Med. Okayama. 2008. V. 62. P. 63-68.
- Mizumoto H., Aoki K., Nakazawa K., Ijima H., Funatsu K., Kajiwara T. // Transplant. Proc. 2008. V. 40. № 2. P. 611-613.
- Snykers S., Vanhaecke T., De Becker A., Papeleu P., Vinken M., Van Riet I., Rogiers V. // BMC Dev. Biol. 2007. V. 2. № 7. P. 24.
- De Kock J., Vanhaecke T., Rogiers V., Snykers S. // Aatex. 2008. V. 14. P. 605-611.
- Gumerova A.A., Shafigullina A.K., Trondin A.A., Gazizov I.M., Andreeva D.I., Kaligin M.S., Rizvanov A.A., Kiasov A.P. // Cell Transplantation and Tissue Engineering. 2011. V. 6(4). P. 72-81.
- Sgodda M., Aurich H., Kleist S., Aurich I., Konig S., Dollinger M.M., Fleig W.E., Christ B. // Exp. Cell Res. 2007. V. 313. P. 2875-2886.
- Seo M.J., Suh S.Y., Bae Y.C., Jung J.S. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2005. V. 328. P. 258-264.
- Stock P., Staege M.S., Muller L.P., Sgodda M., Volker A., Volkmer I., Lutzkendorf J., Christ B. // Transplant. Proc. 2008. V. 40. P. 620-623.
- Dawn M.D., De Coppi P., Bartsch G., Atala A. // Meth. Enzymology. 2006. V. 419. P. 426-438.
- Zheng Y.B., Gao Z.L., Xie C., Zhu H.P., Peng L., Chen J.H., Chong Y.T. // Cell Biol. Internat. 2008. V. 32. № 11. P. 1439-1448.
- Gvazava I.G., Vasilev A.V., Balan O.V., Terskikh V.V. //Tsitologiia. 2011. V. 53. № 2. P.129-134.
- Hisatomi Y., Okumura K., Nakamura K., Matsumoto S., Satoh A., Nagano K., Yamamoto T., Endo F. // Hepatology. 2004. V. 39. P. 667-675.
- Sato A., Okumura K., Matsumoto S., Hattori K., Hattori S., Shinohara M., Endo F. // Cloning Stem. Cells. 2007. V. 9. P. 191-205.
- Matsumoto S., Okumura K., Ogata A., Hisatomi Y., Sato A., Hattori K., Matsumoto M., Kaji Y., Takahashi M., Yamamoto T., et al. // Cloning Stem Cells. 2007. V. 9. P. 176-190.
- Davydova D.A., Voroteliak E.A., Bragina E.E., Terskikh V.V., Vasil’ev A.V. // Tsitologiia. 2011. V. 53(4). P. 325-31.
- Shinin V.V., Chernaia O.G., Terskikh V.V. // Ontogenez. 2002. V. 33(3). P. 176-81.
- Voroteliak E.A., Leonova O.G., Shinin V.V., Vasil’ev A.V., Terskikh V.V. // Dokl. Akad. Nauk. 1999. V. 369(5). P. 695-697.
- Chermnykh E.S., Vorotelyak E.A., Gnedeva K.Y., MoldaverM.V., Yegorov Y.E., Vasiliev A.V., Terskikh V.V. //Histochem. Cell Biol. 2010. V. 133. P. 567-576.
- Zhang Y., Jalili R.B., Warnock G.L., Ao Z., Marzban L., Ghahary A. // The Am. J. Pathol. 2012. V. 181. № 4. P. 1296-1305.
- Babaeva A.G., Shubnikova E.A. Structure, function and adaptive growth of salivary glands. M.: MSU. 1979. P 192.
- Duncan A.W., Dorrell C., Grompe M. // Gastroenterology. 2009. V. 137(2). P. 466-481.
- Reddy J.K., Rao M.S., Yeldandi A.V., Tan X.D., Dwivedi R.S. // Digestive Diseases Sci. 1991. V. 36(4). P. 502-509.
- Dabeva M.D., Hwang S.G., Vasa S.R., Hurston E., Novikoff P.M., Hixson D.C., Gupta S., Shafritz D.A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 8. № 94. P. 7356-7361.