Создание высокоэффективного флуоресцентного зонда для изучения биодеградации фармакологических белковых препаратов in vivo

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Рекомбинантные белки стали одними из лидирующих среди современных фармакологических препаратов. Вместе с тем существующие методы анализа фармакокинетики в большинстве своем не учитывают процесс биодеградации белкового препарата. Закономерности биодеградации белкового фармпрепарата позволяют определить основные пути его выведения из организма при проведении доклинических испытаний. Использование флуоресцентных агентов высокой яркости красного и дальне-красного диапазона дает возможность проводить неинвазивные исследования выведения и распределения белковых препаратов в живом организме. Мы предложили использовать метод избыточной конъюгации белков флуорофорами для создания зонда, позволяющего наблюдать биодеградацию рекомбинантной бутирилхолинэстеразы в организме живой мыши. Установлено, что максимум разгорания флуоресценции, отражающей деградацию фермента, наблюдается через 6 ч после внутривенного введения препарата. Показано, что избыточная конъюгация флуорофора приводит к существенному изменению фармакокинетических параметров препарата. Этот факт необходимо учитывать при выборе метода флуоресцентного «биоимиджинга» при проведении фармакокинетических исследований.

Об авторах

С. С. Терехов

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

И. В. Смирнов

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН; Казанский федеральный университет

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

О. Г. Шамборант

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

М. А. Зенкова

Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

Е. Л. Черноловская

Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

Д. В. Гладких

Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

А. Н. Мурашев

Филиал института биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

И. А. Дьяченко

Филиал института биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

В. Д. Кнорре

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

А. А. Белогуров

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН; Казанский федеральный университет; Институт биологии гена РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

Н. А. Пономаренко

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

С. М. Деев

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

В. В. Власов

Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

А. Г. Габибов

Институт биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН; Казанский федеральный университет; Институт биологии гена РАН

Email: sterekhoff@mail.ru
Россия

Список литературы

  1. Hoppin J., Orcutt K.D., Hesterman J.Y., Silva M.D., Cheng D., Lackas C., Rusckowski M. // JPET . 2011, V.337, №2, P.350-358
  2. Yuskevich V., Khodarovich Y., Kagarliskiy G., Stremovskiy O., Maksimenko O., Lukash S., Polanovsky O., Deyev S. // Biochimie. 2011, V.93, №3, P.628-630
  3. Sreenivasan V.K., Stremovskiy O.A., Kelf T.A., Heblinski M., Goodchild A.K., Connor M., Deyev S.M., Zvyagin A.V. // Bioconjugate Chem. 2011, V.22, №9, P.1768-1775
  4. Stepanov A.V., Belogurov A.A. Jr., Ponomarenko N.A., Stremovskiy O.A., Kozlov L.V., Bichucher A.M., Dmitriev S.E., Smirnov I.V., Shamborant O.G., Balabashin D.S. // PLoS One. 2011, V.6, №6, P.e20991
  5. Orlova N.A., Kovnir S.V., Vorobiev I.I., Gabibov A.G., Vorobiev A.I. // Acta Naturae. 2013, V.5, №2, P.19-39
  6. Yi X.M., Wang F.L., Qin W.J., Yang X.J., Yuan J.L. // International Journal of Nanomedicine. 2014, V.9, №1, P.1347-1365
  7. Vonwil D., Christensen J., Fischer S., Ronneberger O., Shastri V. P. // Molecular Imaging and Biology. 2013, V.16, №3, P.350-361
  8. Satoa K., Watanabea R., Hanaokaa H., Haradaa T., Nakajimaa T., Kimb I., Paikc C.H., Choykea P.L., Kobayashi H. // Molecular Oncology 2014, V.8, №3, P.620-632
  9. Dobosz M., Strobel S., Stubenrauch K.G., Osl F., Scheuer W. // Journal of Biomedical Optics. 2014, V.19, №1, P.16022
  10. Ilyushin D.G., Smirnov I.V., Belogurov A.A., Dyachenko I.A., Zharmukhamedova T.Iu., Novozhilova T.I., Bychikhin E.A., Serebryakova M.V., Kharybin O.N., Murashev A.N. // PNAS. 2013, V.110, №4, P.1243-1248
  11. Ilyushin D.G., Haertley O.M., Bobik T.V., Shamborant O.G., Surina E.A., Knorre V.D., Masson P., Smirnov I.V., Gabibov A.G., Ponomarenko N.A. // Acta Naturae. 2013, V.5, №1, P.73-84
  12. Kobayashi H., Choyke P.L. // Acc Chem Res. 2011, V.44, №2, P.83-90
  13. Zhegalova N. G., He S., Zhou H., Kim D.M., Berezin M.Y. // Contrast Media & Molecular Imaging. 2014, V.9, №5, P.355-362
  14. Moin K., Sameni M., Victor B.C., Rothberg J.M., Mattingly R.R., Sloane B.F. // Methods in Enzymology. 2012, V.506, P.175-194
  15. Hama Y., Urano Y., Koyama Y., Kamiya M., Bernardo M., Paik R.S., Shin I.S., Paik C.H., Choyke P.L., Kobayashi H. // Cancer Research. 2007, V.67, №6, P.2791-2799
  16. Akers W.J., Xu B., Lee H., Sudlow G.P., Fields G.B., Achilefu S., Edwards W.B. // Bioconjugate Chem. 2012, V.23, №3, P.656-663
  17. Vinita A.M., Sano K., Yu Z., Nakajima T., Choyke P.L., Ptaszek M., Kobayashi H. // Bioconjugate Chem. 212, V.23, №8, P.1671-1679
  18. Springa B.Q., Abu-Yousifa A.O., Palanisamia A., Rizvia I., Zhenga X., Maia Z., Anbila S., Searsa R. B., Mensaha L.B., Goldschmidta R. // PNAS. 2014, V.111, №10, P.E933-E942
  19. Ponomarenko N.A., Vorobiev I.I., Alexandrova E.S., Reshetnyak A.V., Telegin G.B., Khaidukov S.V., Avalle B., Karavanov A., Morse H.C. 3rd., Thomas D. // Biochemistry. 2006, V.45, №1, P.324-330
  20. Karnovsky M.J., Roots L. // J Histochem Cytochem. 1964, V.12, P.219-221
  21. Ellman G.L., Courtney K.D., Andres V. Jr., Feather-Stone R.M. // Biochem Pharmacol. 1961, V.7, P.88-95
  22. Ponomarenko N.A., Pillet D., Paon M., Vorobiev I.I., Smirnov I.V., Adenier H., Avalle B., Kolesnikov A.V., Kozyr A.V., Thomas D. // Biochemistry. 2007, V.46, №50, P.14598-14609
  23. Voss E.W., Workman C.J., Mummert M.E. // Biotechniques. 1996, V.20, №2, P.286-291
  24. Sano K., Mitsunaga M., Nakajima T., Choyke P.L., Kobayashi H. // Breast Cancer Research. 2012, V.14, №2, P.61

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Терехов С.С., Смирнов И.В., Шамборант О.Г., Зенкова М.А., Черноловская Е.Л., Гладких Д.В., Мурашев А.Н., Дьяченко И.А., Кнорре В.Д., Белогуров А.А., Пономаренко Н.А., Деев С.М., Власов В.В., Габибов А.Г., 2014

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах