TAL1: его роль в гемопоэзе и в злокачественном перерождении клеток крови

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

TAL1 (SCL/TAL1, T-cell acute leukemia protein 1) - транскрипционный фактор и один из основных участников гемопоэза. TAL1 участвует в процессах дифференцировки клеток крови из мезодермы на ранних стадиях эмбриогенеза и регулирует гемопоэз в зрелом организме. TAL1 необходим для сохранения мультипотентности гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) и удержания их в фазе покоя G0. TAL1 формирует комплексы с различными транскрипционными факторами-участниками гемопоэза (E2A/HEB, GATA1-3, LMO1-2, Ldb1, ETO2, RUNX1, ERG, FLI1). В составе таких комплексов TAL1 участвует в нормальной дифференцировке кроветворных клеток миелоидного ряда, контролирует пролиферацию эритроидных предшественников, а также определяет выбор направления дифференцировки ГСК. SCL-комплекс, основными компонентами которого являются TAL1, E2A, GATA1 (или GATA2), LMO2 и Ldb1, может участвовать в злокачественном перерождении клеток крови. Одна из ключевых ролей SCL-комплекса в канцерогенезе - позитивная регуляция экспрессии рецепторной тирозинкиназы C-KIT. В настоящее время TAL1 и его партнеры рассматриваются в качестве перспективной терапевтической мишени при острых лимфобластных лейкозах.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ Процесс гемопоэза включает несколько этапов, в том числе образование ранних кроветворных клеток предшественников из мезодермы, формирование гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) и их дальнейшую дифференцировку в зрелые клетки крови. Нарушение регуляции этих процессов в гемопоэтических клетках-предшественниках часто приводит к нарушению их нормальной дифференцировки и пролиферации и, как следствие, к злокачественной трансформации. Один из основных регуляторов гемопоэза - транскрипционный фактор TAL1 - имеет домен спираль-петля-спираль, он связывается с ДНК в регуляторных участках, взаимодействуя с последовательностью E-бокса (CANNTG, где N - любой ну клеотид), и в участках связывания факторов GATA, Ets, Runx [1]. Показано, что подавление экспрессии гена TAL1 приводит к полному отсутствию гемопоэза в желточном мешке [2]. Во взрослом организме наиболее высокий уровень экспрессии TAL1 характерен для плюрипотентных ГСК, мультипотентных миелоидных и лимфоидных предшественников, а также для клеток эритроидного и мегакариоци тарного ряда [3]. TAL1 участвует в формировании комплексов с различными транскрипционными факторами (E47/E2A, LMO2, GATA1-3, LMO1/2, Ldb1, ETO2, Runx1, ERG, FLI1) [4, 5]. Состав комплекса может быть разным. От состава комплекса зависит, с какими внутриклеточными мишенями он будет взаимодействовать, оказывая активирующее или ингибирующее действие на экспрессию факто ров, ассоциированных с дифференцировкой клеток миелоидного и лимфоидного ряда [6-8]. Нарушение уровня экспрессии или мутации генов, продукты трансляции которых входят в состав SCL-комплекса, может приводить к злокачественному перерождению клеток крови. Около 60% случаев Т-клеточных острых лимфобластных лейкозов (T-ОЛЛ) характеризуются аномально высоким уровнем экспрессии TAL1 [9]. Мутантные формы TAL1 в клетках миелоидных и лимфоидных лейкозов обнаруживают у 20% пациентов [10]. Одной из основных мишеней TAL1 в злокачественных клетках крови считается промоторный участок гена C-KIT, кодирующего рецепторную тирозинкиназу. В ряде случаев показано, что прогрессия злокачественных заболеваний крови (в том числе острых миелоидных лейкозов) сопровождается аномально повышенной экспрессией C-KIT [11, 12]. TAL1: СТРУКТУРА ГЕНА, ИЗВЕСТНЫЕ ИЗОФОРМЫ БЕЛКА И ИХ ФУНКЦИИ В ГЕМОПОЭЗЕ Локус гена TAL1 находится на хромосоме 1 человека. TAL1 относится к семейству транскрипционных факторов с мотивом спираль-петля-спираль (bHLH). Ген TAL1 содержит шесть экзонов, из которых ко дирующими являются экзоны 4-6. Согласно базе данных PubMed на 2017 год, в настоящий момент описано шесть вариантов транскриптов гена TAL1 (рис. 1). Известны две изоформы белка TAL1: длин ная (TAL1-д) с молекулярной массой 34.3 кДа, со стоящая из 331 аминокислотного остатка, и корот кая (TAL1-к), состоящая из 156 аминокислотных остатков. Соотношение между TAL1-д и TAL1-к различно в клетках мегакариотического и эритро идного ряда [13]. Пре-мРНК TAL1 подвергается аль тернативному сплайсингу, в результате которого может образоваться мРНК, не содержащая экзоны 1-4. В белке TAL1-к - продукте трансляции такой мРНК - отсутствует ETO2-связывающий домен, а также сайты фосфорилирования, тогда как ДНК связывающие домены и домен спираль-петля-спи ральсохраняются. Кроме того, третий экзон TAL1 содержит высоконсервативную последовательность uORF - короткую открытую рамку считывания, которая выступает в роли цис-регуляторного элемента при образовании изоформ TAL1. Наличие uORF де лает возможной инициацию трансляции при участии факторов eIF2 и eIF4E с альтернативных сайтов, находящихся в экзонах 4-5 [14], что приводит к образованию укороченной формы белка TAL1. Укороченная форма TAL1-к необходима для дифференцировки по эритроидному пути, тог да как полноразмерный белок TAL1-д необходим для мегакариотической дифференцировки клеток предшественников. Показано, что обработка линий клеток эритроидного лейкоза человека TF1 и HEL индукторами эритроидной дифференцировки (ДМСО и эритропоэтином) приводит к образованию не толь ко основной (полноразмерной) формы белка TAL1-д, но и укороченной формы TAL1-к [15]. Установлено, что некоторые противоопухолевые препараты, действующие на компоненты сигнальных путей, связанных с регуляцией инициации трансляции, могут влиять на соотношение TAL1-д и TAL1-к. В частности, рапамицин (Rap, ингибитор mTOR) блокирует образование укороченных форм, а 2-аминопурин (2AP, ингибитор eIF2α-киназ) - полноразмерных форм [14]. ФУНКЦИИ TAL1 В ЭМБРИОГЕНЕЗЕ Транскрипционный фактор TAL1 необходим для нормального эмбриогенеза. Его экспрессия начинается на 7-й день после оплодотворения за сутки до начала образования компонентов кровеносной системы. Экспрессия TAL1 обнаружена в клетках островков кроветворения желточного мешка, эндо телиоцитах и ангиобластах, а позднее в печени и селезенке плода - основных кроветворных органов в эмбриогенезе. Показано, что клетки, участвующие в образовании скелетной и нервной ткани, также экспрессируют TAL1 [16]. В желточном мешке и за родышевой печени основными мишенями TAL1 являются промотор гена Runx1 и энхансер гена Runx3 [17]. В регуляторных областях этих генов обнаружены участки связывания факторов Ets, GATA и Runx, а также последовательность E-бокса. TAL1 и его партнеры GATA1, GATA2, E47, Ldb1, LMO2 могут образовывать комплексы на этих участках ДНК [18]. Гемопоэтические клетки-предшественники также могут происходить из клеток гемогенного эндотелия при участии транскрипционного фактора Runx1. Для образования клеток гемогенного эндотелия из мезодермы необходим TAL1 [19]. На более поздних стадиях эмбрионального развития TAL1 регулирует дифференцировку предшественников клеток крови в эритроциты, мегакариоциты и тромбоциты [20]. В ходе эмбриогенеза клетки, формирующие кровеносные сосуды, также экспрессируют TAL1 [16]. Отсутствие экспрессии TAL1 приводит не только к нарушению кроветворения, но и к ран ней гибели эмбрионов [2, 21]. На мышиной модели по казано, что эмбриональные стволовые клетки (ЭСК), не экспрессирующие TAL1, не дифференцируются в кроветворные клетки под действием факторов гемопоэтической дифференцировки [21]. Эктопическая экспрессия TAL1 в ЭСК приводит к индукции формирования гемопоэтических клеток. В экспериментах in vitro показано, что ЭСК, не экспрессирующие TAL1, с низкой эффективностью дифференцируются в клетки эритроидных предшественников и не способны образовывать колонии лимфоидных и миелоидных клеток-предшественников [22]. Таким образом, в эмбриональном развитии TAL1 направляет дифференцировку кроветворных пред шественников на всех трех этапах кроветворения. TAL1 действует на предшественники клеток крови в желточном мешке (первый этап кроветворения), определяет развитие и дифференцировку гемангиобластов с момента их агрегации в первичной полоске до миграции в островки кроветворения желточного мешка (второй этап кроветворения). В начале третьего этапа кроветворения TAL1 необходим для дифференцировки гемангиобластов в ГСК, он активирует экспрессию генов, важных для созревания эритроидных, мегакариотических и тучных клеток, а также участвует в ремоделировании сосудистой системы (рис. 2) [23]. РОЛЬ TAL1 В РЕГУЛЯЦИИ ГЕМОПОЭЗА Зрелые клетки крови взрослого организма образуются из плюрипотентных ГСК. ГСК удерживаются в костном мозге на стадии репликационного покоя G0 за счет взаимодействия их поверхностных клеточных белков-рецепторов (C-KIT, MPL, CXCR4) и лигандов на поверхности стромальных клеток [24, 25]. В ответ на гемопоэтический стресс плюрипотентные ГСК вы ходят из фазы покоя, начиная активно пролиферировать, получают сигналы для дальнейшей дифференцировки и дают начало миелоидным и лимфоидным клеткам-предшественникам. Некоторые транскрипционные факторы, необходимые для осуществления процесса гемопоэза, также являются ключевыми для поддержания ГСК в фазе покоя. К ним относят TAL1, E47, GATA2 и Ldb1, LMO2 - компоненты SCL-комплекса [26]. Переход KLS+/CD150+ /CD48+ ГСК из фазы покоя G0 в стадию G1 осуществляется при участии циклинзависимой киназы P21/CDKN1A. TAL1 блокирует этот переход, усиливая экспрессию ингибитора P21/CDKN1A [27]. Одновременно TAL1 усиливает экспрессию транскрипционного фактора ID1. Важно отметить, что TAL1 не относится к белкам, необходимым для выживания и самообновления ГСК [3]. Родственный ему белок LYL1 обеспечивает выживание ГСК в случае нокаута TAL1 [28]. Интересно, что TAL1 выполняет противоположные функции в ГСК пуповинной крови, где он, напротив, активирует переход G0-G1, который регулируется при участии сигнального пути mTOR [29]. Однако в процессах дифференцировки TAL1 и LYL1 не являются взаимозаменяемыми - оба белка необходимы для нормального эритропоэза и формирования B-клеток соответственно [30]. В отличие от ГСК, в миелоидных и лимфоидных предшественниках TAL1 выполняет функцию активатора клеточного цикла, подавляя экспрессию ингибиторов циклинзависимых киназ p21 и p16/Ink4a [31, 32]. Гемопоэтические транскрипционные факторы TAL1, GATA2, LMO2, уровень экспрессии которых различен в клетках каждого типа, регулируют процесс дифференцировки и созревания клеток крови (рис. 3) [33]. Экспрессия TAL1 неодинакова во всех гемопоэтических клетках. Высокие уровни экспрессии данного гена обнаружены в ГСК, в миелоидных предшественниках и в некоторых зрелых клетках миелоидного ряда (мегакариоцитах, эритроцитах, тучных клетках и базофилах). Низкие уровни TAL1 характерны для лимфоидных предшественников, эозинофилов, макрофагов и ней трофилов [34-36]. Зрелые T- и B-клетки не экс прессируют TAL1 [37]. Активацию некоторых генов, специфичных для эритроидных клеток, осуществляет комплекс, образованный GATA1 и TAL1 [38]. С помощью анализа ChIP-seq показано, что TAL1 контролирует как общие для всех клеток процессы (регуляция клеточного цикла, пролиферация, апоптоз), так и характерные только для эритроидных клеток (окислительно-восстановительные процессы, биосинтез гема, организация цитоскелета), что косвенно указывает на его мультифункциональность [39]. В миелоидных и лимфоидных клетках-предшественниках мишенями TAL1 служат гены, контролирующие пролиферацию и апоптоз. К тому же, пат терн связывания TAL1 с генами-мишенями сильно меняется по мере созревания клеток. Динамические изменения экспрессии TAL1 говорят о том, что фак тор TAL1 проявляет различную активность в клетках при первоначальном выборе направления дифференцировки и образовании зрелых клеток крови. А его мультифункциональность связана непосредственно со способностью образовывать многокомпонентные комплексы в регуляторных областях генов-мишеней [8]. Получены данные, показывающие, что функция TAL1 в дифференцировке клеток эритроидного ряда реализуется, в том числе, при участии каспазы-3, индуцирующей расщепление этого белка. Показано, что ее активность, в конечном итоге, приводит к снижению экспрессии GATA1 и BCL-XL, тем самым индуцируя апоптоз в этих клетках [40]. Некоторые аминокислотные остатки TAL1 могут подвергаться фосфорилированию. Например, в эритроцитах киназа Akt фосфорилирует Thr90 в TAL1. Эта модификация приводит к снижению способности TAL1 репрессировать промотор гена EPB42, продукт которого - белок 4.2, необходим для построения цитоскелета эритроцита [41]. Остаток Ser172 также может быть фосфорилирован cAMP-зависимой про теинкиназой (PKA), что влияет на связывание TAL1 с E-боксом в регуляторных участках различных генов [42]. SCL-КОМПЛЕКС: ЕГО КОМПОНЕНТЫ И МИШЕНИ В НОРМАЛЬНОМ ГЕМОПОЭЗЕ В гемопоэтических клетках основными партнерами TAL1 являются белки, участвующие в нормальном гемопоэзе: LMO2, Ldb1-2, Gata1-3, Lyl-1, E2A/HEB, Runx1, ETO2, ERG, FL1 (рис. 4). TAL1 напрямую связывается с LIM-доменом белка LMO2, который, в свою очередь, взаимодействует с Ldb1. LMO2 не имеет ДНК-связывающего домена и выступает в роли соединяющего фактора (bridge factor), который объединяет TAL1 в комплекс с другими транскрипционными факторами в гемопоэтических клетках [43, 44]. Также он может образовывать расширенный комплекс, связывая ETO2, RUNX1, ERG или FLI1 [45]. Для связывания TAL1 с последовательностями E-бокса (CANNTG) в регуляторных областях геномной ДНК необходимы E-белки (E12, E47), содержащие домены типа спираль-петля-спираль. TAL1 в составе комплекса вы ступает в роли регулятора активности некоторых сигнальных путей во время дифференцировки гемопоэтических клеток. Например, TAL1 необходим для выживания гемопоэтических предшественников, культивируемых в присутствии SCF, лиганда рецепторной тирозинкиназы C-KIT, которая выполняет важную функцию в гемопоэзе [46]. Основная роль SCL-комплекса в регуляции C-KIT связана с его способностью связываться с промотором данного гена. Также установлено, что компоненты SCL-комплекса могут связываться с различными компонентами сиг нального пути C-KIT и приводить к изменению его активности [46-51]. Кроме того, существует прямая корреляция между уровнем экспрессии TAL1 и фосфорилированными формами киназ MEK и ERK1/2, компонентов сигнального пути MEK/ERK [40]. В гемопоэтических клетках активность киназ MEK и ERK1/2 ассоциирована с дифференцировкой гемопоэтических клеток миелоидного, эритроидного и мегакариотического рядов [52]. Вероятно, участие TAL1 в дифференцировке CD34+ гемопоэтических клеток реализуется через сигналы MEK/ERK [52, 53]. ФУНКЦИИ SCL-КОМПЛЕКСА И ЕГО ОТДЕЛЬНЫХ КОМПОНЕНТОВ В КАНЦЕРОГЕНЕЗЕ Как отмечалось выше, в норме уровень экспрессии TAL1 в лимфоидных клетках значительно ниже, чем в миелоидных [37]. Повышенный уровень экспрессии TAL1 в T-клетках часто приводит к их злокачественному перерождению. Аномально высокая экспрессия TAL1 может быть результатом хромосомных перестроек, делеций и мутаций, затрагивающих этот ген [54]. Хромосомная транслокация t(1;14)(p32;q11) обнаружена в 3% случаев T-клеточного лейкоза. Хромосомная транслокация t(1;14)(p32;q11), при водящая к образованию слитого гена TRA/TAL1, обнаружена в 3% случаев T-клеточного лейкоза. Делеция 90 т.п.н. между 5`-некодирующей областью гена TAL1 и геном SIL приводит к образованию слитого гена SIL-TAL1, контролируемого промотором гена SIL [54]. Уровень экспрессии SIL в T-клетках в норме очень высок, поэтому эта транслокация при водит к высокой экспрессии слитого гена SIL-TAL1 [55]. Такая делеция обнаружена у 20-25% пациентов с T-ОЛЛ [54, 56, 57]. Однако в большей части TAL1-позитивных случаев T-клеточных лейкозов аномально высокая экспрессия TAL1 реализуется не за счет хромосомных перестроек. Наряду с высокой экспрессией TAL1 в большей части образцов первичного Т-ОЛЛ обнаружен значительный уровень экспрессии TLX1 и LMO2 [58]. Повышенная активность TAL1 в T-клетках приводит к увеличению времени нахождения лимфоидных клеток в виде незрелых тимоцитов. Предполагается, что это можно считать событием, инициирующим возникновение T-клеточных лейкозов [59]. В клетках T-ОЛЛ TAL1 предпочтительно связывается с последовательностями CAGGTG E-бокса. Несмотря на то что факторы GATA1-3 часто служат посредниками в связывании TAL1 с регуляторными участками ДНК в клетках T-клеточного лейкоза, существуют и альтернативные участки связывания, в частности Runx и Ets [59]. Показано, что транскрипционный фактор TAL1 непосредственно активирует экспрессию Runx1, Ets1 и GATA3 в бластных клетках пациентов с T-ОЛЛ [60]. Кроме того, фак торы GATA3 и Runx1 усиливают экспрессию гена TAL1, что может указывать на необходимость положительной обратной связи для возникновения аномальной экспрессии факторов, участвующих в зло качественном перерождении клеток крови. В 45% случаев TAL1-позитивных лейкозов обнаружены мутантные белки LMO1 и LMO2, образованные в результате хромосомных перестроек кодирующих их генов [61]. Экспрессия всех этих факторов приводит к тому, что двойные негативные (CD4-CD8-) прелей козныетимоциты приобретают способность к делению. Кроме того, в этих клетках часто бывает активирован сигнальный путь Notch, компоненты которого участвуют в накоплении мутаций и нарушении процессов дифференцировки. Это приводит к возникновению и прогрессии Т-клеточного лейкоза [62]. При злокачественном перерождении TAL1 нередко участвует в нарушении нормальной транскрипции Кроме того, существует прямая корреляция между уровнем экспрессии TAL1 и фосфорилирован ными формами киназ MEK и ERK1/2, компонентов сигнального пути MEK/ERK [40]. В гемопоэтических клетках активность киназ MEK и ERK1/2 ассоциирована с дифференцировкой гемопоэтических клеток миелоидного, эритроидного и мегакариотического рядов [52]. Вероятно, участие TAL1 в дифференциров ке CD34+ гемопоэтических клеток реализуется через сигналы MEK/ERK [52, 53]. ФУНКЦИИ SCL-КОМПЛЕКСА И ЕГО ОТДЕЛЬНЫХ КОМПОНЕНТОВ В КАНЦЕРОГЕНЕЗЕ Как отмечалось выше, в норме уровень экспрессии TAL1 в лимфоидных клетках значительно ниже, чем в миелоидных [37]. Повышенный уровень экспрессии TAL1 в T-клетках часто приводит к их злокачественному перерождению. Аномально высокая экспрессия TAL1 может быть результатом хромосомных перестроек, делеций и мутаций, затрагивающих этот ген [54]. Хромосомная транслокация t(1;14)(p32;q11) обнаружена в 3% случаев T-клеточного лейкоза. Хромосомная транслокация t(1;14)(p32;q11), при водящая к образованию слитого гена TRA/TAL1, обнаружена в 3% случаев T-клеточного лейкоза. Делеция 90 т.п.н. между 5`-некодирующей областью гена TAL1 и геном SIL приводит к образованию слитого гена SIL-TAL1, контролируемого промотором гена SIL [54]. Уровень экспрессии SIL в T-клетках в норме очень высок, поэтому эта транслокация при водит к высокой экспрессии слитого гена SIL-TAL1 [55]. Такая делеция обнаружена у 20-25% пациентов с T-ОЛЛ [54, 56, 57]. Однако в большей части TAL1-позитивных случаев T-клеточных лейкозов аномально высокая экспрессия TAL1 реализуется не за счет хромосомных перестроек. Наряду с высокой экспрессией TAL1 в большей части образцов первичного Т-ОЛЛ обнаружен значительный уровень экспрессии TLX1 и LMO2 [58]. Повышенная активность TAL1 в T-клетках приводит к увеличению времени нахождения лимфоидных клеток в виде не зрелых тимоцитов. Предполагается, что это можно считать событием, инициирующим возникновение T-клеточных лейкозов [59]. В клетках T-ОЛЛ TAL1 предпочтительно связывается с последовательностями CAGGTG E-бокса. Несмотря на то что факторы GATA1-3 часто служат посредниками в связывании TAL1 с регуляторными участками ДНК в клетках T-клеточного лейкоза, существуют и альтернативные участки связывания, в частности Runx и Ets [59]. Показано, что транскрипционный фактор TAL1 непосредственно активирует экспрессию Runx1, Ets1 и GATA3 в бластных клетках пациентов с T-ОЛЛ [60]. Кроме того, фак торы GATA3 и Runx1 усиливают экспрессию гена TAL1, что может указывать на необходимость положительной обратной связи для возникновения ано мальной экспрессии факторов, участвующих в зло качественном перерождении клеток крови. В 45% случаев TAL1-позитивных лейкозов обнаружены мутантные белки LMO1 и LMO2, образованные в ре зультате хромосомных перестроек кодирующих их генов [61]. Экспрессия всех этих факторов приводит к тому, что двойные негативные (CD4-CD8-) прелейкозные тимоциты приобретают способность к делению. Кроме того, в этих клетках часто бывает активирован сигнальный путь Notch, компоненты которого участвуют в накоплении мутаций и нарушении процессов дифференцировки. Это приводит к возникновению и прогрессии Т-клеточного лейкоза [62]. При злокачественном перерождении TAL1 нередко участвует в нарушении нормальной транскрипции Кроме того, существует прямая корреляция между уровнем экспрессии TAL1 и фосфорилированными формами киназ MEK и ERK1/2, компонентов сигнального пути MEK/ERK [40]. В гемопоэтических клетках активность киназ MEK и ERK1/2 ассоциирована с дифференцировкой гемопоэтических клеток миелоидного, эритроидного и мегакариотического рядов [52]. Вероятно, участие TAL1 в дифференцировке CD34+ гемопоэтических клеток реализуется через сигналы MEK/ERK [52, 53]. ФУНКЦИИ SCL-КОМПЛЕКСА И ЕГО ОТДЕЛЬНЫХ КОМПОНЕНТОВ В КАНЦЕРОГЕНЕЗЕ Как отмечалось выше, в норме уровень экспрессии TAL1 в лимфоидных клетках значительно ниже, чем в миелоидных [37]. Повышенный уровень экспрессии TAL1 в T-клетках часто приводит к их злокачественному перерождению. Аномально высокая экспрессия TAL1 может быть результатом хромосомных перестроек, делеций и мутаций, затрагивающих этот ген [54]. Хромосомная транслокация t(1;14)(p32;q11) обнаружена в 3% случаев T-клеточного лейкоза. Хромосомная транслокация t(1;14)(p32;q11), при водящая к образованию слитого гена TRA/TAL1, обнаружена в 3% случаев T-клеточного лейкоза. Делеция 90 т.п.н. между 5`-некодирующей областью гена TAL1 и геном SIL приводит к образованию слитого гена SIL-TAL1, контролируемого промотором гена SIL [54]. Уровень экспрессии SIL в T-клетках в норме очень высок, поэтому эта транслокация при водит к высокой экспрессии слитого гена SIL-TAL1 [55]. Такая делеция обнаружена у 20-25% пациентов с T-ОЛЛ [54, 56, 57]. Однако в большей части TAL1-позитивных случаев T-клеточных лейкозов аномально высокая экспрессия TAL1 реализуется не за счет хромосомных перестроек. Наряду с высокой экспрессией TAL1 в большей части образцов первичного Т-ОЛЛ обнаружен значительный уровень экспрессии TLX1 и LMO2 [58]. Повышенная активность TAL1 в T-клетках приводит к увеличению времени нахождения лимфоидных клеток в виде не зрелых тимоцитов. Предполагается, что это можно считать событием, инициирующим возникновение T-клеточных лейкозов [59]. В клетках T-ОЛЛ TAL1 предпочтительно связывается с последовательностями CAGGTG E-бокса. Несмотря на то что факторы GATA1-3 часто служат посредниками в связывании TAL1 с регуляторными участками ДНК в клетках T-клеточного лейкоза, существуют и альтернативные участки связывания, в частности Runx и Ets [59]. Показано, что транскрипционный фактор TAL1 непосредственно активирует экспрессию Runx1, Ets1 и GATA3 в бластных клетках пациентов с T-ОЛЛ [60]. Кроме того, фак торы GATA3 и Runx1 усиливают экспрессию гена TAL1, что может указывать на необходимость положительной обратной связи для возникновения аномальной экспрессии факторов, участвующих в зло качественном перерождении клеток крови. В 45% случаев TAL1-позитивных лейкозов обнаружены мутантные белки LMO1 и LMO2, образованные в результате хромосомных перестроек кодирующих их генов [61]. Экспрессия всех этих факторов приводит к тому, что двойные негативные (CD4-CD8-) прелей козныетимоциты приобретают способность к делению. Кроме того, в этих клетках часто бывает активирован сигнальный путь Notch, компоненты которого участвуют в накоплении мутаций и нарушении процессов дифференцировки. Это приводит к возникновению и прогрессии Т-клеточного лейкоза [62]. При злокачественном перерождении TAL1 нередко участвует в нарушении нормальной транскрипции различных генов. При этом, как и при нормальном гемопоэзе, он образует комплексы с гемопоэтическими факторами LMO2, Ldb1, E12/E47, GATA1-3 [46, 47]. Установлено, что в клетках T-ОЛЛ часто наблюдается сверхэкспрессия TAL1 и LMO2. В норме LMO2 и TAL1 независимо друг от друга регулируют транскрипцию собственных генов-мишеней, однако в клетках Т-ОЛЛ они кооперативно нарушают функцию фактора Е2А, что способствует развитию лейкозов [63, 64]. Показано, что транскрипционный фактор FOXP3 может играть роль опухолевого супрессора при T-клеточных лейкозах. Он связывается с LMO2 и уменьшает вероятность его взаимодействия с TAL1, что приводит к снижению транскрипционной активности комплекса TAL1/LMO2 [65]. Рецепторная тирозинкиназа C-KIT служит одной из основных мишеней TAL1 [48, 66]. Для гемопоэтических клеток-предшественников характерен высокий уровень экспрессии TAL1 и C-KIT. Показано, что эктопическая экспрессия TAL1 приводит к индукции экспрессии C-KIT в B-лимфоцитах, в которых в норме эти гены не экспрессируются [66]. При некоторых злокачественных заболеваниях крови, в том числе при остром миелоидном лейкозе и хроническом миелоидном лейкозе, наблюдается аномально высокая экспрессия C-KIT. Комплекс SCL действует как специфический активатор промотора гена рецепторной тирозинкиназы C-KIT (рис. 5). Для проявления его максимальной активности не обходимы все компоненты комплекса (TAL1, LMO2, Ldb1, GATA2, E47). На модели эмбриональных фи бробластов мыши показано, что транскрипционные факторы E47 и GATA по отдельности не влияют на активность промотора гена C-KIT, несмотря на то, что они активируют транскрипцию многих генов в гемопоэтических клетках человека [66]. В этой же мышиной системе показано, что активация промо тора происходит только при формировании много компонентного комплекса, основным компонентом которого является TAL1. GATA1 и GATA2 взаимозаменяемы, однако комплекс, содержащий GATA1, обладает меньшей транскрипционной активностью. Для формирования активного SCL-комплекса необходим также белок Sp1, содержащий цинковые пальцы и связывающий GC-богатые последовательности. Показано, что удаление E-бокса и GATA из промо торной области C-KIT не снижает активирующую активность SCL-комплекса. Возможно, Sp1 участвует также в привлечении компонентов комплекса к некоторым генам-мишеням. КЛИНИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ TAL1 Большое количество данных об участии TAL1 в развитии Т-клеточных лейкозов указывает на воз- Рис 6. Схема возможных партнеров TAL1 и взаимодействий между ними в нормальных и злокачественных гемопоэтических клетках можность использования ингибиторов этого белка, а также ингибиторов сигнальных каскадов, ассоциированных с ним, в качестве перспективных терапевтических средств борьбы с лейкозами, для которых характерна аномальная активность TAL1. В настоящее время во многих лабораториях активно разрабатываются и синтезируются новые низкомолекулярные ингибиторы TAL1. Однако до сих пор не получен достаточно мощный и специфичный ингибитор данного белка. Для транскрипционной активности TAL1 необходимо его фосфорилирование киназами MEK/ERK. Обсуждается перспектива использования ингибиторов компонентов сигнального пути MAPK/MEK/ERK в качестве возможных терапевтических мишеней [67]. В то же время получены данные, свидетельствующие о том, что обработка клеточной культуры мезенхимальных стромальных клеток (компонентов стромы костного мозга) инги биторами MEK приводит к секреции ими провоспалительного цитокина интерлейкина-18 [68]. Это способствует улучшению выживаемости бластных клеток T-ОЛЛ. В качестве перспективных мишеней для терапии TAL1-ассоциированных Т-клеточных лейкозов рассматривают потенциальные белковые мишени TAL1, связанные с реализацией его транс крипционной активности (рис. 6). К числу таких бел ков относится деметилаза UTX (также называемая KDM6A). Показано, что обработка TAL1-позитивных бластных клеток Т-ОЛЛ ингибитором UTX приводит к снижению скорости их пролиферации и к стимуляции апоптоза [69]. Установлено, что использование ингибиторов гистоновых деацетилаз HDAC приводит к снижению экспрессии TAL1 и к индукции апоптозабластных клеток T-клеточных лейкозов [70]. В настоящее время активно изучают стехиометрию SCL-комплекса. Ожидается, что результаты этих исследований откроют новые возможности для поиска высокоэффективных терапевтических агентов, направленных на TAL1-позитивные лейкозы, которые действуют путем нарушения белок-белковых взаимодействий между компонентами SCL-комплекса и не влияют на жизнеспособность нормальных гемо поэтических клеток [41].

×

Об авторах

Э. Р. Вагапова

Институт молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: elmira-mi@mail.ru
Россия

П. В. Спирин

Институт молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН

Email: elmira-mi@mail.ru
Россия

Т. Д. Лебедев

Институт молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН

Email: elmira-mi@mail.ru
Россия

В. С. Прасолов

Институт молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАНИнститут молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН

Email: elmira-mi@mail.ru
Россия

Список литературы

  1. Hoang T., Lambert J.A., Martin R. // Curr. Top. Dev. Biol. 2016, V.118, P.163-204
  2. Robb L., Lyons I., Li R., Hartley L., Kontgen F., Harvey R.P., Metcalf D., Begley C.G. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995, V.92, №15, P.7075-7079
  3. Mikkola H.K., Klintman J., Yang H., Hock H., Schlaeger T.M., Fujiwara Y., Orkin S.H. // Nature 2003, V.421, №6922, P.547-551
  4. Lécuyer E., Hoang T. // Exp. Hematol. 2004, V.32, №1, P.11-24
  5. Goardon N., Lambert J.A., Rodriguez P., Nissaire P., Herblot S., Thibault P., Dumenil D., Strouboulis J., Romeo P.H., Hoang T. // EMBO J. 2006, V.25, №2, P.357-366
  6. Anderson K.P., Crable S.C., Lingrel J.B. // J. Biol. Chem. 1998, V.273, №23, P.14347-14354
  7. Org T., Duan D., Ferrari R., Montel-Hagen A., van Handel B., Kerenyi M.A., Sasidharan R., Rubbi L., Fujiwara Y., Pellegrini M. // EMBO J. 2015, V.34, №6, P.759-777
  8. Wu W., Morrissey C.S., Keller C.A., Mishra T., Pimkin M., Blobel G.A., Weiss M.J., Hardison R.C. // Genome Res. 2014, V.24, №12, P.1945-1962
  9. Ferrando A.A., Neuberg D.S., Staunton J., Loh M.L., Huard C., Raimondi S.C., Behm F.G., Pui C.H., Downing J.R., Gilliland D.G. // Cancer Cell. 2002, V.1, №1, P.75-87
  10. Begley C.G., Aplan P.D., Davey M.P., Nakahara K., Tchorz K., Kurtzberg J., Hershfield M.S., Haynes B.F., Cohen D.I., Waldmann T.A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989, V.86, №6, P.2031-2035
  11. Spirin P.V., Lebedev T.D., Orlova N.N., Gornostaeva A.S., Prokofjeva M.M., Nikitenko N.A., Dmitriev S.E., Buzdin A.A., Borisov N.M., Aliper A.M. // Leukemia. 2014, V.28, №11, P.2222-2228
  12. Orlova N.N., Lebedev T.D., Spirin P.V., Prassolov V.S. // Molec. Biol. 2016, V.50, №3, P.344-352
  13. Jin S., Su H., Tran N.T., Song J., Lu S.S., Li Y., Huang S., Abdel-Wahab O., Liu Y., Zhao X. // PLoS One. 2017, V.12, №5, e0175523
  14. Calkhoven C.F., Muller C., Martin R., Krosl G., Pietsch H., Hoang T., Leutz A. // Genes Dev. 2003, V.17, №8, P.959-964
  15. Zhen F., Lan Y., Yan B., Zhang W., Wen Z. // Development. 2013, V.140, №19, P.3977-3985
  16. Kallianpur A.R., Jordan J.E., Brandt S.J. // Blood. 1994, V.83, №5, P.1200-1208
  17. Landry J.R., Kinston S., Knezevic K., de Bruijn M.F., Wilson N., Nottingham W.T., Peitz M., Edenhofer F., Pimanda J.E., Ottersbach K. // Blood. 2008, V.111, №6, P.3005-3014
  18. Real P.J., Ligero G., Ayllon V., Ramos-Mejia V., Bueno C., Gutierrez-Aranda I., Navarro-Montero O., Lako M., Menendez P. // Molecular Therapy 2012, V.20, №7, P.1443-1453
  19. Lancrin C., Sroczynska P., Stephenson C., Allen T., Kouskoff V., Lacaud G. // Nature 2009, V.457, №7231, P.892-895
  20. Toscano M.G., Navarro-Montero O., Ayllon V., Ramos-Mejia V., Guerrero-Carreno X., Bueno C., Romero T., Lamolda M., Cobo M., Martin F. // Molecular Therapy 2015, V.23, №1, P.158-170
  21. Shivdasani R.A., Mayer E.L., Orkin S.H. // Nature 1995, V.373, №6513, P.432-434
  22. Robertson S.M., Kennedy M., Shannon J.M., Keller G. // Development. 2000, V.127, №11, P.2447-2459
  23. Porcher C., Chagraoui H., Kristiansen M.S. // Blood. 2017, V.129, №15, P.2051-2060
  24. Curtis D.J., Hall M.A., van Stekelenburg L.J., Robb L., Jane S.M., Begley C.G. // Blood. 2004, V.103, №9, P.3342-3348
  25. Gottgens B., Nastos A., Kinston S., Piltz S., Delabesse E.C., Stanley M., Sanchez M.J., Ciau-Uitz A., Patient R., Green A.R. // EMBO J. 2002, V.21, №12, P.3039-3050
  26. Zhang Y., Payne K.J., Zhu Y., Price M.A., Parrish Y.K., Zielinska E., Barsky L.W., Crooks G.M. // Stem Cells. 2005, V.23, №6, P.852-860
  27. Lacombe J., Herblot S., Rojas-Sutterlin S., Haman A., Barakat S., Iscove N.N., Sauvageau G., Hoang T. // Blood. 2010, V.115, №4, P.792-803
  28. Capron C., Lecluse Y., Kaushik A.L., Foudi A., Lacout C., Sekkai D., Godin I., Albagli O., Poullion I., Svinartchouk F. // Blood. 2006, V.107, №12, P.4678-4686
  29. Benyoucef A., Calvo J., Renou L., Arcangeli M.L., van den Heuvel A., Amsellem S., Mehrpour M., Larghero J., Soler E., Naguibneva I. // Stem Cells. 2015, V.33, №7, P.2268-2279
  30. Souroullas G.P., Salmon J.M., Sablitzky F., Curtis D.J., Goodell M.A. // Cell Stem Cell. 2009, V.4, №2, P.180-186
  31. Chagraoui H., Kassouf M., Banerjee S., Goardon N., Clark K., Atzberger A., Pearce A.C., Skoda R.C., Ferguson D.J., Watson S.P. // Blood. 2011, V.118, №3, P.723-735
  32. Dey S., Curtis D.J., Jane S.M., Brandt S.J. // Mol. Cell. Biol. 2010, V.30, №9, P.2181-2192
  33. Zhu J., Emerson S.G. // Oncogene. 2002, V.21, №21, P.3295-3313
  34. Akashi K., Traver D., Miyamoto T., Weissman I.L. // Nature 2000, V.404, P.193-197
  35. Green A.R., Salvaris E., Begley C.G. // Oncogene. 1991, V.6, №3, P.475-459
  36. Hall M.A., Curtis D.J., Metcalf D., Elefanty A.G., Sourris K., Robb L., Gothert J.R., Jane S.M., Begley C.G. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003, V.100, №3, P.992-997
  37. Mouthon M.A., Bernard O., Mitjavila M.T., Romeo P.H., Vainchenker W., Mathieu-Mahul D. // Blood. 1993, V.81, №3, P.647-655
  38. Moignard V., Macaulay I.C., Swiers G., Buettner F., Schutte J., Calero-Nieto F.J., Kinston S., Joshi A., Hannah R., Theis F.J. // Nat. Cell Biol. 2013, V.15, №4, P.363-372
  39. Kassouf M.T., Hughes J.R., Taylor S., McGowan S.J., Soneji S., Green A.L., Vyas P., Porcher C. // Genome Res. 2010, V.20, №8, P.1064-1083
  40. Zhou R.Q., Wu J.H., Gong Y.P., Guo Y., Xing H.Y. // Blood Cells Mol. Dis. 2014, V.53, P.39-46
  41. Palamarchuk A., Efanov A., Maximov V., Aqeilan R.I., Croce C.M., Pekarsky Y. // Cancer Research 2005, V.65, №11, P.4515-4519
  42. Prasad K.S., Brandt S.J. // J. Biol. Chem. 1997, V.272, №17, P.11457-11462
  43. Wadman I.A., Osada H., Grutz G.G., Agulnick A.D., Westphal H., Forster A., Rabbitts T.H. // EMBO J. 1997, V.16, №11, P.3145-3157
  44. Osada H., Grutz G.G., Axelson H., Forster A., Rabbitts T.H. // Leukemia. 1997, V.11, P.307-312
  45. Schuh A.H., Tipping A.J., Clark A.J., Hamlett I., Guyot B., Iborra F.J., Rodriguez P., Strouboulis J., Enver T., Vyas P. // Mol. Cell. Biol. 2005, V.25, №23, P.10235-10250
  46. Krosl G., He G., Lefrancois M., Charron F., Romeo P.H., Jolicoeur P., Kirsch I.R., Nemer M., Hoang T. // J. Exp. Med. 1998, V.188, №3, P.439-450
  47. Rojas-Sutterlin S., Lecuyer E., Hoang T. // Curr. Opin. Hematol. 2014, V.21, №4, P.256-264
  48. Lacombe J., Krosl G., Tremblay M., Gerby B., Martin R., Aplan P.D., Lemieux S., Hoang T. // Blood. 2013, V.122, №7, P.1150-1161
  49. Cheng J.T., Cobb M.H., Baer R. // Mol. Cell. Biol. 1993, V.13, №2, P.801-808
  50. Tang T., Prasad K.S., Koury M.J., Brandt S.J. // Biochem. J. 1999, V.343, P.615-620
  51. Tang T., Arbiser J.L., Brandt S.J. // J. Biol. Chem. 2002, V.277, №21, P.18365-18372
  52. Bugarski D., Krstic A., Mojsilovic S., Vlaski M., Petakov M., Jovcic G., Stojanovic N., Milenkovic P. // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2007, V.232, №1, P.156-163
  53. Zeuner A., Eramo A., Testa U., Felli N., Pelosi E., Mariani G., Srinivasula S.M., Alnemri E.S., Condorelli G., Peschle C. // Cell Death Differ. 2003, V.10, №8, P.905-913
  54. Liu Y., Easton J., Shao Y., Maciaszek J., Wang Z., Wilkinson M.R., McCastlain K., Edmonson M., Pounds S.B., Shi L. // Nat. Genet. 2017, V.49, №8, P.1211-1218
  55. Chen Q., Cheng J.T., Tasi L.H., Schneider N., Buchanan G., Carroll A., Crist W., Ozanne B., Siciliano M.J., Baer R. // EMBO J. 1990, V.9, №2, P.415-424
  56. Correia N.C., Arcangeli M.L., Pflumio F., Barata J.T. // Leukemia. 2016, V.30, №10, P.1968-1978
  57. Begley C.G., Green A.R. // Blood. 1999, V.93, №9, P.2760-2770
  58. Sayitoglu M., Erbilgin Y., Hatirnaz Ng O., Yildiz I., Celkan T., Anak S., Devecioglu O., Aydogan G., Karaman S., Sarper N. // Turk. J. Haematol. 2012, V.29, №4, P.325-333
  59. Zhou Y., Kurukuti S., Saffrey P., Vukovic M., Michie A.M., Strogantsev R., West A.G., Vetrie D. // Blood. 2013, V.122, №26, P.4199-4209
  60. Liau W.S., Ngoc P.C., Sanda T. // Adv. Exp. Med. Biol. 2017, V.962, P.139-147
  61. Palii C.G., Perez-Iratxeta C., Yao Z., Cao Y., Dai F., Davison J., Atkins H., Allan D., Dilworth F.J., Gentleman R. // EMBO J. 2011, V.30, №3, P.494-509
  62. Aplan P.D., Jones C.A., Chervinsky D.S., Zhao X., Ellsworth M., Wu C., McGuire E.A., Gross K.W. // EMBO J. 1997, V.16, №9, P.2408-2419
  63. Ryan D.P., Duncan J.L., Lee C., Kuchel P.W., Matthews J.M. // Proteins. 2008, V.70, №4, P.1461-1474
  64. Patterson L.J., Gering M., Eckfeldt C.E., Green A.R., Verfaillie C.M., Ekker S.C., Patient R. // Blood. 2007, V.109, №6, P.2389-2398
  65. Fleskens V., Mokry M., van der Leun A.M., Huppelschoten S., Pals C.E., Peeters J., Coenen S., Cardoso B.A., Barata J.T., van Loosdregt J. // Oncogene. 2016, V.35, №31, P.4141-4148
  66. Lecuyer E., Herblot S., Saint-Denis M., Martin R., Begley C.G., Porcher C., Orkin S.H., Hoang T. // Blood. 2002, V.100, №7, P.2430-2440
  67. Spirin P., Lebedev T., Orlova N., Morozov A., Poymenova N., Dmitriev S.E., Buzdin A., Stocking C., Kovalchuk O., Prassolov V. // Oncotarget. 2017, V.8, №34, P.56991-57002
  68. Uzan B., Poglio S., Gerby B., Wu C.L., Gross J., Armstrong F., Calvo J., Cahu X., Deswarte C., Dumont F. // EMBO Mol. Med. 2014, V.6, №6, P.821-834
  69. Benyoucef A., Palii C.G., Wang C., Porter C.J., Chu A., Dai F., Tremblay V., Rakopoulos P., Singh K., Huang S. // Genes Devel. 2016, V.30, №5, P.508-521
  70. Cardoso B.A., deAlmeida S.F., Laranjeira A.B., Carmo-Fonseca M., Yunes J.A., Coffer P.J., Barata J.T. // Leukemia. 2011, V.25, №10, P.1578-1586

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Вагапова Э.Р., Спирин П.В., Лебедев Т.Д., Прасолов В.С., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах