Поиск ингибиторов транскетолазы из Mycobacterium tuberculosis в ряду сульфозамещенных соединений
- Авторы: Гущина И.В.1, Нилов Д.К.1, Щербакова Т.А.1, Балдин С.М.1, Швядас В.К.1
-
Учреждения:
- Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 15, № 2 (2023)
- Страницы: 81-83
- Раздел: Краткие сообщения
- Дата подачи: 18.02.2023
- Дата принятия к публикации: 12.05.2023
- Дата публикации: 03.08.2023
- URL: https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/15709
- DOI: https://doi.org/10.32607/actanaturae.15709
- ID: 15709
Цитировать
Аннотация
В результате компьютерного скрининга библиотеки сульфозамещенных соединений выявлены молекулы, способные связываться в активном центре транскетолазы из Mycobacterium tuberculosis. Осуществлена экспериментальная проверка ингибиторной активности наиболее перспективного соединения STK045765 в отношении высокоочищенного препарата рекомбинантного фермента. Показано, что молекула STK045765 конкурирует за участок связывания пирофосфатной группы кофактора тиаминдифосфата и в микромолярных концентрациях способна подавлять активность микобактериальной транскетолазы. Обнаруженный фурансульфонатный скаффолд может служить основой для создания противотуберкулезных препаратов.
Ключевые слова
Полный текст
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
mbТК – транскетолаза микобактерий
ВВЕДЕНИЕ
Лечение туберкулеза основано на продолжительной многокомпонентной химиотерапии и зачастую сопровождается развитием лекарственной устойчивости у Mycobacterium tuberculosis. В связи с этим чрезвычайно актуален поиск новых молекулярных мишеней и разработка препаратов, способных селективно подавлять развитие микобактерий. Анализ генома штамма H37Rv M. tuberculosis позволил установить метаболические пути, подавление которых может служить основой для разработки новых лекарственных средств. В частности, важное значение имеет пентозофосфатный путь и связанный с ним фермент транскетолаза (mbТК) [1, 2]. mbTK катализирует обратимый перенос двухуглеродного фрагмента субстрата-донора (кетосахар) на субстрат-акцептор (альдоза). Один из субстратов mbTK, рибозо-5-фосфат, используется для синтеза клеточной стенки микобактерий [3, 4]. В настоящей работе мы осуществили компьютерный скрининг способности сульфозамещенных соединений связываться в активном центре mbТК и экспериментальную проверку ингибиторных свойств отобранного наиболее перспективного кандидата.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Молекулярная модель mbТК для докинга была получена на основе кристаллической структуры 3rim [4]. Атомы водорода добавляли с учетом ионизационных свойств аминокислотных остатков в программе AmberTools 1.2, затем их координаты оптимизировали в пакете Amber 12 [5] с использованием алгоритмов наискорейшего спуска и сопряженных градиентов. Библиотека сульфозамещенных соединений для скрининга была сконструирована на основе коммерческого набора низкомолекулярных соединений Vitas-M (https://vitasmlab.biz) с использованием структурного поиска по сульфогруппе в программе ACD/SpectrusDB (https://www.acdlabs.com). Соединения докировали в активный центр модели mbТК с помощью Lead Finder 1.1.16 [6]. Область поиска охватывала участок связывания кофактора тиаминдифосфата и субстрата [7]. При докировании отбирали соединения, способные к образованию электростатического взаимодействия с ионом Mg2+ (для этого использовали Perl-скрипт структурной фильтрации), а также других благоприятных контактов.
Рекомбинантный белок mbТК получали с использованием плазмиды pET-19b с геном Rv1449c и штамма Escherichia coli BL21(DE3). Выделение и очистку белка проводили как описано ранее [8, 9]. Активность mbТК измеряли по сопряженной реакции восстановления NAD+, катализируемой глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназой из мышц кролика [10]. Система для измерения активности содержала: глицил-глицин (50 мМ), дитиотреитол (3.2 мМ), арсенат натрия (10 мМ), хлорид магния (2.5 мМ), тиаминдифосфат (5 мкМ), ксилулозо-5-фосфат (140 мкМ), рибозо-5-фосфат (560 мкМ), NAD+ (370 мкМ), глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназу (3 Е) и разные концентрации ингибитора STK045765 (0–1000 мкМ). Реакцию начинали добавлением раствора апоформы mbТК в реакционную смесь, инкубируемую в термостатируемой ячейке при рН 7.6 и 25°С. Скорость реакции регистрировали по увеличению оптической плотности раствора при 340 нм с помощью спектрофотометра Shimadzu UV-1800.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
В активном центре mbТК располагается кофактор тиаминдифосфат, а также ион Mg2+ [4]. Взаимодействие пирофосфатной группы с Mg2+ вносит существенный вклад в энергию связывания тиаминдифосфата и имеет важное значение для дизайна ингибиторов транскетолаз, которые для mbТК до проведения наших исследований не были известны.
Рис. 1. Химические структуры потенциальных ингибиторов mbТК, отобранных в результате компьютерного скрининга
В качестве возможного структурного миметика пирофосфатной группы, способного образовать электростатическое взаимодействие с ионами металлов, была выбрана сульфогруппа. Из библиотеки коммерчески доступных низкомолекулярных веществ извлечено 320 молекул с концевой (отрицательно заряженной) сульфогруппой и 563 молекулы с этерифицированной сульфогруппой. В результате докинга определены позиции связывающихся соединений этого класса в активном центре mbТК; полученные результаты были подвергнуты структурной фильтрации, учитывающей наличие прямого электростатического взаимодействия сульфогруппы с Mg2+. При экспертном анализе позиций отобранных соединений идентифицированы пять соединений с концевой сульфогруппой (рис. 1), эффективно взаимодействующих с Mg2+ и окружающими остатками активного центра mbТК. Менее эффективные взаимодействия этерифицированных сульфонатов указывают на то, что для связывания ингибиторов в активном центре mbTK необходима отрицательно заряженная группа.
Рис. 2. Модель фермент-ингибиторного комплекса mbТК и STK045765. Сульфогруппа способна взаимодействовать с ионом Mg2+ и образовать водородную связь с остатком His85, гидрофобный бициклический структурный фрагмент комплементарен участку, сформированному остатками Ile211, Leu402 и Phe464. Рисунок подготовлен с использованием VMD 1.9.2 [11]
Для экспериментального тестирования ингибиторных свойств была отобрана молекула STK045765, образующая наиболее благоприятные связи и контакты при моделировании фермент-ингибиторных комплексов. В данной молекуле фурансульфонатный и нафталиновый фрагменты соединены гидразидным линкером. Отрицательно заряженная сульфогруппа STK045765 способна взаимодействовать с ионом Mg2+ и боковой цепью His85 (рис. 2) подобно пирофосфатной группе кофактора. Наряду с этим имеют место выгодные гидрофобные контакты бициклического структурного фрагмента STK045765 с боковыми цепями Ile211, Leu402 и Phe464. Экспериментальная проверка подтвердила выводы молекулярного моделирования. При добавлении ингибитора в реакционную смесь обнаружено подавление активности mbТК: так в присутствии STK045765 в концентрации 1 мМ остаточная активность составила 27% (рис. 3).
Ile211, Leu402 и Phe464. Рисунок подготовлен с использованием VMD 1.9.2 [11]
Рис. 3. Влияние ингибитора STK045765 на каталитиче- скую активность mbТК
ВЫВОДЫ
Компьютерный скрининг библиотеки сульфозамещенных соединений позволил идентифицировать потенциальные ингибиторы, способные связываться в активном центре mbТК и конкурировать с кофактором тиаминдифосфатом. Экспериментальная проверка одного из кандидатов (STK045765, содержащего фурансульфонатную группу) в отношении высокоочищенного препарата mbTK подтвердила, что соединения данного класса способны подавлять ферментативную активность. В результате проведенного исследования обнаружен первый (в своем классе) ингибитор mbТК, структура которого может стать основой для разработки более эффективных ингибиторов – прототипов противотуберкулезных препаратов.
*************
Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда (грант № 15-14-00069-П).
Об авторах
Ирина Владимировна Гущина
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: irinafbb@gmail.com
аспирант, факультет биоинженерии и биоинформатики
Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 73Дмитрий Константинович Нилов
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: nilovdm@gmail.com
кандидат химических наук, старший научный сотрудник отдела биокинетики, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского
Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1, стр. 40Татьяна Анатольевна Щербакова
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: selftatyana@gmail.com
кандидат химических наук, научный сотрудник отдела биокинетики, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского
Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1, стр. 40Семен Михайлович Балдин
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: vytas@belozersky.msu.ru
НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского
Россия, 119991, МоскваВитаутас Каятоно Швядас
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Автор, ответственный за переписку.
Email: vytas@belozersky.msu.ru
ORCID iD: 0000-0002-1664-0307
доктор химических наук, профессор факультета биоинженерии и биоинформатики, главный научный сотрудник НИИ ФХБ им. А.Н.Белозерского, зав. лабораторией, Научно-исследовательский вычислительный центр
Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 73Список литературы
- Cole S.T., Brosch R., Parkhill J., Garnier T., Churcher C., Harris D., Gordon S.V., Eiglmeier K., Gas S., Barry C.E., 3rd, et al. // Nature. 1998. V. 393. P. 537–544.
- Kolly G.S., Sala C., Vocat A., Cole S.T. // FEMS Microbiol. Lett. 2014. V. 358. P. 30–35.
- Wolucka B.A. // FEBS J. 2008. V. 275. P. 2691–2711.
- Fullam E., Pojer F., Bergfors T., Jones T.A., Cole S.T. // Open Biol. 2012. V. 2. P. 110026.
- Case D.A., Darden T.A., Cheatham T.E., 3rd, Simmerling C.L., Wang J., Duke R.E., Luo R., Walker R.C., Zhang W., Merz K.M., et al. AMBER 12. San Francisco: University of California, 2012.
- Stroganov O.V., Novikov F.N., Stroylov V.S., Kulkov V., Chilov G.G. // J. Chem. Inf. Model. 2008. V. 48. P. 2371–2385.
- Lüdtke S., Neumann P., Erixon K.M., Leeper F., Kluger R., Ficner R., Tittmann K. // Nat. Chem. 2013. V. 5. P. 762–767.
- Щербакова Т.А., Балдин С.М., Шумков М.С., Гущина И.В., Нилов Д.К., Швядас В.К. // Acta Naturae. 2022. Т. 14. № 2. С. 93–97.
- Мешалкина Л.Е., Соловьева О.Н., Ходак Ю.А., Друца В.Л., Кочетов Г.А. // Биохимия. 2010. Т. 75. С. 992–1000.
- Kochetov G.A. // Methods Enzymol. 1982. V. 90. P. 209–223.
- Humphrey W., Dalke A., Schulten K. // J. Mol. Graph. 1996. V. 14. P. 33–38.