Поиск ингибиторов транскетолазы из Mycobacterium tuberculosis в ряду сульфозамещенных соединений

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В результате компьютерного скрининга библиотеки сульфозамещенных соединений выявлены молекулы, способные связываться в активном центре транскетолазы из Mycobacterium tuberculosis. Осуществлена экспериментальная проверка ингибиторной активности наиболее перспективного соединения STK045765 в отношении высокоочищенного препарата рекомбинантного фермента. Показано, что молекула STK045765 конкурирует за участок связывания пирофосфатной группы кофактора тиаминдифосфата и в микромолярных концентрациях способна подавлять активность микобактериальной транскетолазы. Обнаруженный фурансульфонатный скаффолд может служить основой для создания противотуберкулезных препаратов.

Полный текст

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

mbТК – транскетолаза микобактерий

ВВЕДЕНИЕ

Лечение туберкулеза основано на продолжительной многокомпонентной химиотерапии и зачастую сопровождается развитием лекарственной устойчивости у Mycobacterium tuberculosis. В связи с этим чрезвычайно актуален поиск новых молекулярных мишеней и разработка препаратов, способных селективно подавлять развитие микобактерий. Анализ генома штамма H37Rv M. tuberculosis позволил установить метаболические пути, подавление которых может служить основой для разработки новых лекарственных средств. В частности, важное значение имеет пентозофосфатный путь и связанный с ним фермент транскетолаза (mbТК) [1, 2]. mbTK катализирует обратимый перенос двухуглеродного фрагмента субстрата-донора (кетосахар) на субстрат-акцептор (альдоза). Один из субстратов mbTK, рибозо-5-фосфат, используется для синтеза клеточной стенки микобактерий [3, 4]. В настоящей работе мы осуществили компьютерный скрининг способности сульфозамещенных соединений связываться в активном центре mbТК и экспериментальную проверку ингибиторных свойств отобранного наиболее перспективного кандидата.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

Молекулярная модель mbТК для докинга была получена на основе кристаллической структуры 3rim [4]. Атомы водорода добавляли с учетом ионизационных свойств аминокислотных остатков в программе AmberTools 1.2, затем их координаты оптимизировали в пакете Amber 12 [5] с использованием алгоритмов наискорейшего спуска и сопряженных градиентов. Библиотека сульфозамещенных соединений для скрининга была сконструирована на основе коммерческого набора низкомолекулярных соединений Vitas-M (https://vitasmlab.biz) с использованием структурного поиска по сульфогруппе в программе ACD/SpectrusDB (https://www.acdlabs.com). Соединения докировали в активный центр модели mbТК с помощью Lead Finder 1.1.16 [6]. Область поиска охватывала участок связывания кофактора тиаминдифосфата и субстрата [7]. При докировании отбирали соединения, способные к образованию электростатического взаимодействия с ионом Mg2+ (для этого использовали Perl-скрипт структурной фильтрации), а также других благоприятных контактов.

Рекомбинантный белок mbТК получали с использованием плазмиды pET-19b с геном Rv1449c и штамма Escherichia coli BL21(DE3). Выделение и очистку белка проводили как описано ранее [8, 9]. Активность mbТК измеряли по сопряженной реакции восстановления NAD+, катализируемой глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназой из мышц кролика [10]. Система для измерения активности содержала: глицил-глицин (50 мМ), дитиотреитол (3.2 мМ), арсенат натрия (10 мМ), хлорид магния (2.5 мМ), тиаминдифосфат (5 мкМ), ксилулозо-5-фосфат (140 мкМ), рибозо-5-фосфат (560 мкМ), NAD+ (370 мкМ), глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназу (3 Е) и разные концентрации ингибитора STK045765 (0–1000 мкМ). Реакцию начинали добавлением раствора апоформы mbТК в реакционную смесь, инкубируемую в термостатируемой ячейке при рН 7.6 и 25°С. Скорость реакции регистрировали по увеличению оптической плотности раствора при 340 нм с помощью спектрофотометра Shimadzu UV-1800.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

В активном центре mbТК располагается кофактор тиаминдифосфат, а также ион Mg2+ [4]. Взаимодействие пирофосфатной группы с Mg2+ вносит существенный вклад в энергию связывания тиаминдифосфата и имеет важное значение для дизайна ингибиторов транскетолаз, которые для mbТК до проведения наших исследований не были известны.

 

Рис. 1. Химические структуры потенциальных ингибиторов mbТК, отобранных в результате компьютерного скрининга

 

В качестве возможного структурного миметика пирофосфатной группы, способного образовать электростатическое взаимодействие с ионами металлов, была выбрана сульфогруппа. Из библиотеки коммерчески доступных низкомолекулярных веществ извлечено 320 молекул с концевой (отрицательно заряженной) сульфогруппой и 563 молекулы с этерифицированной сульфогруппой. В результате докинга определены позиции связывающихся соединений этого класса в активном центре mbТК; полученные результаты были подвергнуты структурной фильтрации, учитывающей наличие прямого электростатического взаимодействия сульфогруппы с Mg2+. При экспертном анализе позиций отобранных соединений идентифицированы пять соединений с концевой сульфогруппой (рис. 1), эффективно взаимодействующих с Mg2+ и окружающими остатками активного центра mbТК. Менее эффективные взаимодействия этерифицированных сульфонатов указывают на то, что для связывания ингибиторов в активном центре mbTK необходима отрицательно заряженная группа.

 

Рис. 2. Модель фермент-ингибиторного комплекса mbТК и STK045765. Сульфогруппа способна взаимодействовать с ионом Mg2+ и образовать водородную связь с остатком His85, гидрофобный бициклический структурный фрагмент комплементарен участку, сформированному остатками Ile211, Leu402 и Phe464. Рисунок подготовлен с использованием VMD 1.9.2 [11]

 

Для экспериментального тестирования ингибиторных свойств была отобрана молекула STK045765, образующая наиболее благоприятные связи и контакты при моделировании фермент-ингибиторных комплексов. В данной молекуле фурансульфонатный и нафталиновый фрагменты соединены гидразидным линкером. Отрицательно заряженная сульфогруппа STK045765 способна взаимодействовать с ионом Mg2+ и боковой цепью His85 (рис. 2) подобно пирофосфатной группе кофактора. Наряду с этим имеют место выгодные гидрофобные контакты бициклического структурного фрагмента STK045765 с боковыми цепями Ile211, Leu402 и Phe464. Экспериментальная проверка подтвердила выводы молекулярного моделирования. При добавлении ингибитора в реакционную смесь обнаружено подавление активности mbТК: так в присутствии STK045765 в концентрации 1 мМ остаточная активность составила 27% (рис. 3).

Ile211, Leu402 и Phe464. Рисунок подготовлен с использованием VMD 1.9.2 [11]

 

Рис. 3. Влияние ингибитора STK045765 на каталитиче- скую активность mbТК

 

ВЫВОДЫ

Компьютерный скрининг библиотеки сульфозамещенных соединений позволил идентифицировать потенциальные ингибиторы, способные связываться в активном центре mbТК и конкурировать с кофактором тиаминдифосфатом. Экспериментальная проверка одного из кандидатов (STK045765, содержащего фурансульфонатную группу) в отношении высокоочищенного препарата mbTK подтвердила, что соединения данного класса способны подавлять ферментативную активность. В результате проведенного исследования обнаружен первый (в своем классе) ингибитор mbТК, структура которого может стать основой для разработки более эффективных ингибиторов – прототипов противотуберкулезных препаратов.

*************

Работа выполнена при финансовой поддержке Российского научного фонда (грант № 15-14-00069-П).

×

Об авторах

Ирина Владимировна Гущина

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: irinafbb@gmail.com

аспирант, факультет биоинженерии и биоинформатики

Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 73

Дмитрий Константинович Нилов

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: nilovdm@gmail.com

кандидат химических наук, старший научный сотрудник отдела биокинетики, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского

Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1, стр. 40

Татьяна Анатольевна Щербакова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: selftatyana@gmail.com

кандидат химических наук, научный сотрудник отдела биокинетики, НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского

Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, 1, стр. 40

Семен Михайлович Балдин

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: vytas@belozersky.msu.ru

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского

Россия, 119991, Москва

Витаутас Каятоно Швядас

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: vytas@belozersky.msu.ru
ORCID iD: 0000-0002-1664-0307

доктор химических наук, профессор факультета биоинженерии и биоинформатики, главный научный сотрудник НИИ ФХБ им. А.Н.Белозерского, зав. лабораторией, Научно-исследовательский вычислительный центр

Россия, 119991, Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 73

Список литературы

  1. Cole S.T., Brosch R., Parkhill J., Garnier T., Churcher C., Harris D., Gordon S.V., Eiglmeier K., Gas S., Barry C.E., 3rd, et al. // Nature. 1998. V. 393. P. 537–544.
  2. Kolly G.S., Sala C., Vocat A., Cole S.T. // FEMS Microbiol. Lett. 2014. V. 358. P. 30–35.
  3. Wolucka B.A. // FEBS J. 2008. V. 275. P. 2691–2711.
  4. Fullam E., Pojer F., Bergfors T., Jones T.A., Cole S.T. // Open Biol. 2012. V. 2. P. 110026.
  5. Case D.A., Darden T.A., Cheatham T.E., 3rd, Simmerling C.L., Wang J., Duke R.E., Luo R., Walker R.C., Zhang W., Merz K.M., et al. AMBER 12. San Francisco: University of California, 2012.
  6. Stroganov O.V., Novikov F.N., Stroylov V.S., Kulkov V., Chilov G.G. // J. Chem. Inf. Model. 2008. V. 48. P. 2371–2385.
  7. Lüdtke S., Neumann P., Erixon K.M., Leeper F., Kluger R., Ficner R., Tittmann K. // Nat. Chem. 2013. V. 5. P. 762–767.
  8. Щербакова Т.А., Балдин С.М., Шумков М.С., Гущина И.В., Нилов Д.К., Швядас В.К. // Acta Naturae. 2022. Т. 14. № 2. С. 93–97.
  9. Мешалкина Л.Е., Соловьева О.Н., Ходак Ю.А., Друца В.Л., Кочетов Г.А. // Биохимия. 2010. Т. 75. С. 992–1000.
  10. Kochetov G.A. // Methods Enzymol. 1982. V. 90. P. 209–223.
  11. Humphrey W., Dalke A., Schulten K. // J. Mol. Graph. 1996. V. 14. P. 33–38.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Химические структуры потенциальных ингибиторов mbТК, отобранных в результате компьютерного скрининга

Скачать (121KB)
3. Рис. 2. Модель фермент-ингибиторного комплекса mbТК и STK045765. Сульфогруппа способна взаимодействовать с ионом Mg2+ и образовать водородную связь с остатком His85, гидрофобный бициклический структурный фрагмент комплементарен участку, сформированному остатками Ile211, Leu402 и Phe464. Рисунок подготовлен с использованием VMD 1.9.2 [11]

Скачать (182KB)
4. Рис. 3. Влияние ингибитора STK045765 на каталитическую активность mbТК

Скачать (145KB)

© Гущина И.В., Нилов Д.К., Щербакова Т.А., Балдин С.М., Швядас В.К., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах