Acta NaturaeActa NaturaeActa Naturae2075-8251Acta Naturae Ltd2741010.32607/actanaturae.27410ReviewsОбзорыReview ArticleMolecular Mechanisms of Drosophila HematopoiesisМолекулярные механизмы гемопоэза дрозофилыSinenkoS. A.СиненкоС. А.
Russian Federation
s.sinenko@incras.ruInstitute of Cytology Russian Academy of SciencesИнститут цитологии РАН210820241624210504202431052024Copyright ©; 2024, Sinenko S.A.Copyright ©; 2024, Синенко С.А.2024Sinenko S.A.Синенко С.А.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/27410

As а model organism, the fruit fly (Drosophila melanogaster) has assumed a leading position in modern biological research. The Drosophila genetic system has a number of advantages making it a key model in investigating the molecular mechanisms of metazoan developmental processes. Over the past two decades, significant progress has been made in understanding the molecular mechanisms regulating Drosophila hematopoiesis. This review discusses the major advances in investigating the molecular mechanisms involved in maintaining the population of multipotent progenitor cells and their differentiation into mature hemocytes in the hematopoietic organ of the Drosophila larva. The use of the Drosophila hematopoietic organ as a model system for hematopoiesis has allowed to characterize the complex interactions between signaling pathways and transcription factors in regulating the maintenance and differentiation of progenitor cells through the signals from the hematopoietic niche, autocrine and paracrine signals, and the signals emanated by differentiated cells.

Модельный организм – плодовая мушка Drosophila melanogaster – занял одно из ведущих мест в современных биологических исследованиях. Генетическая модельная система дрозофилы имеет ряд преимуществ, позволяющих ей лидировать в исследовании молекулярных механизмов процессов развития многоклеточных организмов. За последние два десятилетия достигнут существенный прогресс в изучении механизмов, регулирующих гемопоэз, или кроветворение у дрозофилы. В данном обзоре обсуждаются основные достижения в понимании молекулярных механизмов, участвующих в поддержании популяции мультипотентных прогениторных клеток и их дифференцировки в зрелые гемоциты, в гемопоэтическом органе личинки дрозофилы. Использование гемопоэтического органа дрозофилы в качестве модельной системы гемопоэза позволило охарактеризовать сложные взаимодействия между сигнальными путями и транскрипционными факторами в регуляции поддержания и дифференцировки прогениторных клеток посредством сигналов из гемопоэтической ниши, аутокринных и паракринных сигналов и сигналов, исходящих от дифференцированных клеток.

hematopoiesishematopoietic organmultipotencyhematopoietic stem cellshematopoietic nicheDrosophila melanogasterhemocytesdifferentiationsignaling pathwaystranscription factorsгемопоэзкроветворениегемопоэтический органмультипотентностьгемопоэтические стволовые клеткигемопоэтическая нишадрозофилаDrosophila melanogasterгемоцитыдифференцировкасигнальные путитранскрипционные факторыМинистерство образования и науки Российской ФедерацииMinistry of Education and Science of the Russian Federation075-15-2021-1075Morgan T.H. // Sci. Mon. 1935. V. 41. № 1. P. 5–18.Morgan T.H. // Am. Nat. 1917. V. 51. № 609. P. 513–544.Nefedova L.N. // Russ. J. Dev. Biol. 2020. V. 51. № 4. P. 201–211.Osadchiy I.S., Kamalyan S.O., Tumashova K.Y., Georgiev P.G., Maksimenko O.G. // Acta Naturae. 2023. V. 15. № 2. P. 70–74.Brand A.H., Perrimon N. // Development. 1993. V. 118. № 2. P. 401–415.Evans C.J., Olson J.M., Ngo K.T., Kim E., Lee N.E., Kuoy E., Patananan A.N., Sitz D., Tran P., Do M.-T. et al. // Nat. Meth. 2009. V. 6. № 8. P. 603–605.Evans C.J., Olson J.M., Ngo K.T., Kim E., Lee N.E., Kuoy E., Patananan A.N., Sitz D., Tran P., Do M.-T., et al. // Nat. Meth. 2009. V. 6. № 8. P. 603–605.Hu Y., Comjean A., Rodiger J., Liu Y., Gao Y., Chung V., Zirin J., Perrimon N., Mohr S. E. // Nucleic Acids Res. 2021. V. 49. № D1. P. D908–D915.Hu Y., Comjean A., Rodiger J., Liu Y., Gao Y., Chung V., Zirin J., Perrimon N., Mohr S.E. // Nucleic Acids Res. 2021. V. 49. № D1. P. D908–D915.Cooley L., Kelley R., Spradling A. // Science. 1988. V. 239. № 4844. P. 1121–1128.Bokel C. // Methods Mol. Biol. 2008. V. 420. P. 119–138.Braun A., Lemaitre B., Lanot R., Zachary D., Meister M. // Genetics. 1997. V. 147. № 2. P. 623–634.Nemudryi A.A., Valetdinova K.R., Medvedev S.P., Zakian S.M. // Acta Naturae. 2014. V. 6. № 3. P. 19–40.Friedman A., Perrimon N. // Curr. Opin. Genet. Dev. 2004. V. 14. № 5. P. 470–476.Sinenko S.A., Kim E.K., Wynn R., Manfruelli P., Ando I., Wharton K.A., Perrimon N., Mathey-Prevot B. // Dev. Biol. 2004. V. 273. № 1. P. 48–62.Kaufman T. C. // Genetics. 2017. V. 206. № 2. P. 665–689.Kaufman T.C. // Genetics. 2017. V. 206. № 2. P. 665–689.St Johnston D. // Nat. Rev. Genet. 2002. V. 3. № 3. P. 176–188.Reitman Z.J., Sinenko S.A., Spana E.P., Yan H. // Blood. 2015. V. 125. № 2. P. 336–345.Sinenko S.A., Hung T., Moroz T., Tran Q.M., Sidhu S., Cheney M.D., Speck N.A., Banerjee U. // Blood. 2010. V. 116. № 22. P. 4612–4620.Hales K.G., Korey C.A., Larracuente A.M., Roberts D.M. // Genetics. 2015. V. 201. № 3. P. 815–842.Schneider D. // Nat. Rev. Genet. 2000. V. 1. № 3. P. 218–226.Perrimon N. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. № 17. P. 9716–9717.Celniker S.E., Rubin G.M. // Annu. Rev. Genomics Hum. Genet. 2003. V. 4. P. 89–117.Sinenko S.A. // Oncotarget. 2017. V. 8. № 41. P. 70452–70462.Yang C.S., Sinenko S.A., Thomenius M.J., Robeson A.C., Freel C.D., Horn S.R., Kornbluth S. // Cell Death Differ. 2014. V. 21. № 4. P. 604–611.Shrestha R., Gateff E. // Dev. Growth. Differ. 1982. V. 24. № 1. P. 65–82.Mathey-Prevot B., Perrimon N. // Cell. 1998. V. 92. № 6. P. 697–700.Lanot R., Zachary D., Holder F., Meister M. // Dev. Biol. 2001. V. 230. № 2. P. 243–257.Evans C.J., Hartenstein V., Banerjee U. // Dev. Cell. 2003. V. 5. № 5. P. 673–690.Millar D.A., Ratcliffe N.A. // Endeavour. 1989. V. 13. № 2. P. 72–77.Evans C.J., Sinenko S.A., Mandal L., MartinezAgosto J.A., Hartenstein V., Banerjee U., Rolf B. Genetic Dissection of Hematopoiesis Using Drosophila as a Model System // Advances in Developmental Biology: Elsevier, 2007. P. 259.Evans C.J., Sinenko S.A., Mandal L., Martinez-Agosto J.A., Hartenstein V., Banerjee U., Rolf B. Genetic Dissection of Hematopoiesis Using Drosophila as a Model System // Advances in Developmental Biology. Elsevier, 2007. P. 259.Honti V., Csordas G., Kurucz E., Markus R., Ando I. // Dev. Comp. Immunol. 2014. V. 42. № 1. P. 47–56.Koranteng F., Cho B., Shim J. // Mol. Cells. 2022. V. 45. № 3. P. 101–108.Banerjee U., Girard J.R., Goins L.M., Spratford C.M. // Genetics. 2019. V. 211. № 2. P. 367–417.Morin-Poulard I., Tian Y., Vanzo N., Crozatier M. // Front. Immunol. 2021. V. 12. P. 719349.Kharrat B., Csordas G., Honti V. // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. № 14. P. 7767.Tepass U., Fessler L.I., Aziz A., Hartenstein V. // Development. 1994. V. 120. № 7. P. 1829–1837.Holz A., Bossinger B., Strasser T., Janning W., Klapper R. // Development. 2003. V. 130. № 20. P. 4955–4962.Honti V., Csordas G., Markus R., Kurucz E., Jankovics F., Ando I. // Mol. Immunol. 2010. V. 47. № 11–12. P. 1997–2004.Ghosh S., Singh A., Mandal S., Mandal L. // Dev. Cell. 2015. V. 33. № 4. P. 478–488.Srdić Ž., Reinhardt C. // Science. 1980. V. 207. № 4437. P. 1375–1377.Gateff E. // Science. 1978. V. 200. № 4349. P. 1448–1459.Jung S.H., Evans C.J., Uemura C., Banerjee U. // Development. 2005. V. 132. № 11. P. 2521–2533.Rugendorff A., Younossi-Hartenstein A., Hartenstein V. // Rouxs Arch. Dev. Biol. 1994. V. 203. № 5. P. 266–280.Cho B., Yoon S.H., Lee D., Koranteng F., Tattikota S.G., Cha N., Shin M., Do H., Hu Y., Oh S. Y., et al. // Nat. Commun. 2020. V. 11. № 1. P. 4483.Cattenoz P.B., Monticelli S., Pavlidaki A., Giangrande A. // Front. Cell Dev. Biol. 2021. V. 9. P. 643712.Fu Y., Huang X., Zhang P., van de Leemput J., Han Z. // J. Genet. Genomics. 2020. V. 47. № 4. P. 175–186.Cattenoz P.B., Sakr R., Pavlidaki A., Delaporte C., Riba A., Molina N., Hariharan N., Mukherjee T., Giangrande A. // EMBO J. 2020. V. 39. № 12. P. e104486.Tattikota S.G., Cho B., Liu Y., Hu Y., Barrera V., Steinbaugh M.J., Yoon S.H., Comjean A., Li F., Dervis F., et al. // Elife. 2020. V. 9. P. e54818.Russo J., Dupas S., Frey F., Carton Y., Brehelin M. // Parasitology. 1996. V. 112 (Pt 1). P. 135–142.Brehelin M. // Cell Tissue. Res. 1982. V. 221. № 3. P. 607– 615.Brehelin M. // Cell Tissue. Res. 1982. V. 221. № 3. P. 607–615.Charroux B., Royet J. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009. V. 106. № 24. P. 9797–9802.Kurucz E., Vaczi B., Markus R., Laurinyecz B., Vilmos P., Zsamboki J., Csorba K., Gateff E., Hultmark D., Ando I. // Acta Biol. Hung. 2007. V. 58 Suppl. P. 95–111.Franc N.C., Heitzler P., Ezekowitz R.A., White K. // Science. 1999. V. 284. № 5422. P. 1991–1994.Kocks C., Cho J. H., Nehme N., Ulvila J., Pearson A. M., Meister M., Strom C., Conto S. L., Hetru C., Stuart L. M., et al. // Cell. 2005. V. 123. № 2. P. 335–346.Bretscher A.J., Honti V., Binggeli O., Burri O., Poidevin M., Kurucz E., Zsamboki J., Ando I., Lemaitre B. // Biol. Open. 2015. V. 4. № 3. P. 355–363.Irving P., Ubeda J.M., Doucet D., Troxler L., Lagueux M., Zachary D., Hoffmann J.A., Hetru C., Meister M. // Cell. Microbiol. 2005. V. 7. № 3. P. 335–350.Kurucz E., Markus R., Zsamboki J., Folkl-Medzihradszky K., Darula Z., Vilmos P., Udvardy A., Krausz I., Lukacsovich T., Gateff E. et al. // Curr. Biol. 2007. V. 17. № 7. P. 649–654.Kurucz E., Markus R., Zsamboki J., Folkl-Medzihradszky K., Darula Z., Vilmos P., Udvardy A., Krausz I., Lukacsovich T., Gateff E., et al. // Curr. Biol. 2007. V. 17. № 7. P. 649–654.Balandin S., Ovchinnikova T. // Russ. J. Bioorganic Chem. 2016. V. 42. № 3. P. 229–248.Баландин С.В., Овчинникова Т.В. // Биоорган. химия. 2016. Т. 42. № 3. С. 255–275.Olofsson B., Page D.T. // Dev. Biol. 2005. V. 279. № 1. P. 233–243.Bunt S., Hooley C., Hu N., Scahill C., Weavers H., Skaer H. // Dev. Cell. 2010. V. 19. № 2. P. 296–306.Nelson R.E., Fessler L.I., Takagi Y., Blumberg B., Keene D.R., Olson P.F., Parker C.G., Fessler J.H. // EMBO J. 1994. V. 13. № 15. P. 3438–3447.Defaye A., Evans I., Crozatier M., Wood W., Lemaitre B., Leulier F. // J. Innate Immun. 2009. V. 1. № 4. P. 322–334.Sears H.C., Kennedy C.J., Garrity P.A. // Development. 2003. V. 130. № 15. P. 3557–3565.Guillou A., Troha K., Wang H., Franc N.C., Buchon N. // PLoS Pathog. 2016. V. 12. № 10. P. e1005961.Shia A.K., Glittenberg M., Thompson G., Weber A.N., Reichhart J.M., Ligoxygakis P. // J. Cell Sci. 2009. V. 122. № 24. P. 4505–4515.Binggeli O., Neyen C., Poidevin M., Lemaitre B. // PLoS Pathog. 2014. V. 10. № 5. P. e1004067.Dudzic J.P., Kondo S., Ueda R., Bergman C.M., Lemaitre B. // BMC Biol. 2015. V. 13. P. 81.Tang H., Kambris Z., Lemaitre B., Hashimoto C. // J. Biol. Chem. 2006. V. 281. № 38. P. 28097–28104.Nam H.J., Jang I.H., You H., Lee K.A., Lee W.J. // EMBO J. 2012. V. 31. № 5. P. 1253–1265.Nappi A.J., Vass E., Frey F., Carton Y. // Eur. J. Cell. Biol. 1995. V. 68. № 4. P. 450–456.Ramet M., Manfruelli P., Pearson A., Mathey-Prevot B., Ezekowitz R.A. // Nature. 2002. V. 416. № 6881. P. 644–648.Galko M.J., Krasnow M.A. // PLoS Biol. 2004. V. 2. № 8. P. E239.Neyen C., Binggeli O., Roversi P., Bertin L., Sleiman M.B., Lemaitre B. // Dev. Comp. Immunol. 2015. V. 50. № 2. P. 166–174.Rizki T.M., Rizki R.M. // Dev. Comp. Immunol. 1992. V. 16. № 2–3. P. 103–110.Shrestha R., Gateff E. // Development, Growth and Differentiation. 1982. V. 24. № 1. P. 83–98.Anderl I., Vesala L., Ihalainen T.O., Vanha-Aho L.M., Ando I., Ramet M., Hultmark D. // PLoS Pathog. 2016. V. 12. № 7. P. e1005746.Nam H.J., Jang I.H., Asano T., Lee W.J. // Mol. Cells. 2008. V. 26. № 6. P. 606–610.Honti V., Kurucz E., Csordas G., Laurinyecz B., Markus R., Ando I. // Immunol. Lett. 2009. V. 126. № 1–2. P. 83–84.Tokusumi T., Shoue D.A., Tokusumi Y., Stoller J.R., Schulz R.A. // Genesis. 2009. V. 47. № 11. P. 771–774.Evans C.J., Liu T., Banerjee U. // Methods. 2014. V. 68. № 1. P. 242–251.Rus F., Kurucz E., Markus R., Sinenko S.A., Laurinyecz B., Pataki C., Gausz J., Hegedus Z., Udvardy A., Hultmark D., et al. // Gene Expr. Patterns. 2006. V. 6. № 8. P. 928–934.Sinenko S.A., Mathey-Prevot B. // Oncogene. 2004. V. 23. № 56. P. 9120–9128.Semenova N.Y., Bessmel’tsev S.S., Rugal’ V.I. // Klin. Onkogematol. 2014. V. 7. № 4. P. 501–510.Charbord P., Pouget C., Binder H., Dumont F., Stik G., Levy P., Allain F., Marchal C., Richter J., Uzan B., et al. // Cell Stem Cell. 2014. V. 15. № 3. P. 376–391.Belyavsky A., Petinati N., Drize N. // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 17. P. 9231.Comazzetto S., Shen B., Morrison S. J. // Dev. Cell. 2021. V. 56. № 13. P. 1848–1860.Morrison S.J., Spradling A.C. // Cell. 2008. V. 132. № 4. P. 598–611.Fuller M.T., Spradling A.C. // Science. 2007. V. 316. № 5823. P. 402–404.Homem C.C., Knoblich J.A. // Development. 2012. V. 139. № 23. P. 4297–4310.Micchelli C.A., Perrimon N. // Nature. 2006. V. 439. № 7075. P. 475–479.Minakhina S., Steward R. // Development. 2010. V. 137. № 1. P. 27–31.Dey N.S., Ramesh P., Chugh M., Mandal S., Mandal L. // Elife. 2016. V. 5. P. e18295.Ho K.Y.L., Carr R.L., Dvoskin A.D., Tanentzapf G. // Elife. 2023. V. 12. P. e84085.Girard J.R., Goins L.M., Vuu D.M., Sharpley M.S., Spratford C.M., Mantri S.R., Banerjee U. // Elife. 2021. V. 10. P. e67516.Mandal L., Banerjee U., Hartenstein V. // Nat. Genet. 2004. V. 36. № 9. P. 1019–1023.Medvinsky A., Dzierzak E. // Cell. 1996. V. 86. № 6. P. 897–906.Mandal L., Martinez-Agosto J.A., Evans C.J., Hartenstein V., Banerjee U. // Nature. 2007. V. 446. № 7133. P. 320–324.Crozatier M., Ubeda J.M., Vincent A., Meister M. // PLoS Biol. 2004. V. 2. № 8. P. E196.Rodrigues D., Renaud Y., VijayRaghavan K., Waltzer L., Inamdar M. S. // Elife. 2021. V. 10. P. e61409.Sinenko S.A., Mandal L., Martinez-Agosto J.A., Banerjee U. // Dev. Cell. 2009. V. 16. № 5. P. 756–763.Owusu-Ansah E., Banerjee U. // Nature. 2009. V. 461. № 7263. P. 537–541.Crozatier M., Meister M. // Cell. Microbiol. 2007. V. 9. № 5. P. 1117–1126.Krzemien J., Dubois L., Makki R., Meister M., Vincent A., Crozatier M. // Nature. 2007. V. 446. № 7133. P. 325–328.Mondal B.C., Mukherjee T., Mandal L., Evans C.J., Sinenko S.A., Martinez-Agosto J. A., Banerjee U. // Cell. 2011. V. 147. № 7. P. 1589–1600.Tokusumi Y., Tokusumi T., Shoue D.A., Schulz R.A. // PLoS One. 2012. V. 7. № 7. P. e41604.Lebestky T., Jung S.H., Banerjee U. // Genes Dev. 2003. V. 17. № 3. P. 348–353.Krzemien J., Oyallon J., Crozatier M., Vincent A. // Dev. Biol. 2010. V. 346. № 2. P. 310–319.Mohammad K., Dakik P., Medkour Y., Mitrofanova D., Titorenko V.I. // Int. J. Mol. Sci. 2019. V. 20. № 9. P. 2158.Hombria J.C., Brown S., Hader S., Zeidler M.P. // Dev. Biol. 2005. V. 288. № 2. P. 420–433.Benmimoun B., Polesello C., Haenlin M., Waltzer L. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. V. 112. № 29. P. 9052–9057.Oyallon J., Vanzo N., Krzemien J., Morin-Poulard I., Vincent A., Crozatier M. // PLoS One. 2016. V. 11. № 2. P. e0148978.Grigorian M., Liu T., Banerjee U., Hartenstein V. // Dev. Biol. 2013. V. 384. № 2. P. 301–312.Makhijani K., Alexander B., Tanaka T., Rulifson E., Bruckner K. // Development. 2011. V. 138. № 24. P. 5379–5391.Goto A., Kadowaki T., Kitagawa Y. // Dev. Biol. 2003. V. 264. № 2. P. 582–591.Mukherjee T., Kim W. S., Mandal L., Banerjee U. // Science. 2011. V. 332. № 6034. P. 1210–1213.Terriente-Felix A., Li J., Collins S., Mulligan A., Reekie I., Bernard F., Krejci A., Bray S. // Development. 2013. V. 140. № 4. P. 926–937.Lebestky T., Chang T., Hartenstein V., Banerjee U. // Science. 2000. V. 288. № 5463. P. 146–149.Tokusumi T., Sorrentino R.P., Russell M., Ferrarese R., Govind S., Schulz R. A. // PLoS One. 2009. V. 4. № 7. P. e6429.Spratford C.M., Goins L.M., Chi F., Girard J.R., Macias S.N., Ho V.W., Banerjee U. // Development. 2021. V. 148. № 24. P. 200216.Ferguson G.B., Martinez-Agosto J.A. // Dev. Biol. 2017. V. 425. № 1. P. 21–32.Shim J., Mukherjee T., Mondal B.C., Liu T., Young G.C., Wijewarnasuriya D.P., Banerjee U. // Cell. 2013. V. 155. № 5. P. 1141–1153.Baldeosingh R., Gao H., Wu X., Fossett N. // Dev. Biol. 2018. V. 441. № 1. P. 132–145.Benmimoun B., Polesello C., Waltzer L., Haenlin M. // Development. 2012. V. 139. № 10. P. 1713–1717.Pennetier D., Oyallon J., Morin-Poulard I., Dejean S., Vincent A., Crozatier M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012. V. 109. № 9. P. 3389–3394.Khadilkar R.J., Rodrigues D., Mote R.D., Sinha A.R., Kulkarni V., Magadi S.S., Inamdar M.S. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014. V. 111. № 13. P. 4898–4903.Destalminil-Letourneau M., Morin-Poulard I., Tian Y., Vanzo N., Crozatier M. // Elife. 2021. V. 10. P. e64672.Morin-Poulard I., Sharma A., Louradour I., Vanzo N., Vincent A., Crozatier M. // Nat. Commun. 2016. V. 7. P. 11634.Ramesh P., Dey N. S., Kanwal A., Mandal S., Mandal L. // Elife. 2021. V. 10. P. e67158.Ho K.Y.L., An K., Carr R.L., Dvoskin A.D., Ou A.Y.J., Vogl W., Tanentzapf G. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2023. V. 120. № 45. P. e2303018120.Sinenko S.A., Shim J., Banerjee U. // EMBO Rep. 2012. V. 13. № 1. P. 83–89.Louradour I., Sharma A., Morin-Poulard I., Letourneau M., Vincent A., Crozatier M., Vanzo N. // Elife. 2017. V. 6. P. e25496.Gao H., Wu X., Fossett N. // Molecular and Cellular Biology. 2009. V. 29. № 22. P. 6086–6096.Zhang C.U., Cadigan K.M. // Development. 2017. V. 144. № 13. P. 2415–2427.Zhang C.U., Blauwkamp T.A., Burby P.E., Cadigan K.M. // PLoS Genet. 2014. V. 10. № 8. P. e1004509.Goins L.M., Girard J.R., Mondal B.C., Buran S., Su C.C., Tang R., Biswas T., Banerjee U. // bioRxiv. 2023. 10.1101/2023.06.29.547151. P. 2023.2006.2029.547151.Dragojlovic-Munther M., Martinez-Agosto J.A. // Dev. Biol. 2013. V. 384. № 2. P. 313–330.Zhang W., Wang D., Si J., Jin L. H., Hao Y. // Cells. 2023. V. 12. № 4. P. 661.Makki R., Meister M., Pennetier D., Ubeda J.M., Braun A., Daburon V., Krzemien J., Bourbon H.M., Zhou R., Vincent A., et al. // PLoS Biol. 2010. V. 8. № 8. P. e1000441.Flaherty M.S., Salis P., Evans C. J., Ekas L. A., Marouf A., Zavadil J., Banerjee U., Bach E.A. // Dev. Cell. 2010. V. 18. № 4. P. 556–568.Minakhina S., Tan W., Steward R. // Dev. Biol. 2011. V. 352. № 2. P. 308–316.Gao H., Wu X., Fossett N. // PLoS One. 2013. V. 8. № 9. P. e74684.Kulkarni V., Khadilkar R.J., Magadi S.S., Inamdar M.S. // PLoS One. 2011. V. 6. № 11. P. e27667.Sinha A., Khadilkar R.J., S V.K., Roychowdhury Sinha A., Inamdar M. S. // Cell Rep. 2013. V. 4. № 4. P. 649–658.Sinenko S.A., Starkova T.Y., Kuzmin A.A., Tomilin A.N. // Front. Cell Dev. Biol. 2021. V. 9. P. 714370.Lennicke C., Cocheme H.M. // Mol. Cell. 2021. V. 81. № 18. P. 3691–3707.Gao H., Wu X., Simon L., Fossett N. // PLoS One. 2014. V. 9. № 9. P. e107768.Cho B., Shin M., Chang E., Son S., Shin I., Shim J. // Dev. Cell. 2024. V. 59. № 8. P. 1075–1090.Dolezal T., Dolezelova E., Zurovec M., Bryant P. J. // PLoS Biol. 2005. V. 3. № 7. P. e201.Bajgar A., Dolezal T. // PLoS Pathog. 2018. V. 14. № 4. P. e1007022.Belenkaya T.Y., Han C., Yan D., Opoka R.J., Khodoun M., Liu H., Lin X. // Cell. 2004. V. 119. № 2. P. 231–244.Hao Y., Jin L.H. // Elife. 2017. V. 6. P. e25094.Khadilkar R.J., Vogl W., Goodwin K., Tanentzapf G. // Elife. 2017. V. 6. P. e28081.Labrosse C., Eslin P., Doury G., Drezen J.M., Poirie M. // J. Insect Physiol. 2005. V. 51. № 2. P. 161–170.Nassel D.R., Liu Y., Luo J. // Gen. Comp. Endocrinol. 2015. V. 221. P. 255–266.Dragojlovic-Munther M., Martinez-Agosto J.A. // Development. 2012. V. 139. № 20. P. 3752–3763.