Acta NaturaeActa NaturaeActa Naturae2075-8251Acta Naturae Ltd1161110.32607/actanaturae.11611ReviewsОбзорыReview ArticleThe Evolution of Targeted Radionuclide Diagnosis of HER2-Positive Breast CancerЭволюция таргетной радионуклидной диагностики HER2-позитивного рака молочной железыBraginaOlga D.БрагинаОльга Дмитриевна
Russian Federation
rungis@mail.ruDeyevSergei M.ДеевСергей Михайлович
Russian Federation
rungis@mail.ruChernovVladimir I.ЧерновВладимир Иванович
Russian Federation
rungis@mail.ruTolmachevVladimir M.ТолмачевВладимир Максимиллианович
Russian Federation
rungis@mail.ruTomsk National Research Medical Center of the Russian Academy of Sciences Cancer Research instituteТомский национальный исследовательский медицинский центр РАНNational Research Tomsk Polytechnic UniversityНациональный исследовательский Томский политехнический университетShemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of SciencesИнститут биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАНUppsala UniversityУпсальский университет210720221424152010202116032022Copyright ©; 2022, Bragina O.D., Deyev S.M., Chernov V.I., Tolmachev V.M.Copyright ©; 2022, Брагина О.Д., Деев С.М., Чернов В.И., Толмачев В.М.2022Bragina O.D., Deyev S.M., Chernov V.I., Tolmachev V.M.Брагина О.Д., Деев С.М., Чернов В.И., Толмачев В.М.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/11611

This review examines the evolution of the radionuclide diagnosis of HER2-positive breast cancer using various compounds as a targeting module in clinical practice: from full-length antibodies to a new group of small synthetic proteins called alternative scaffold proteins. This topic is of especial relevance today in view of the problems attendant to the detection of breast cancer with HER2/neu overexpression, which, in most cases, introduce errors in the treatment of patients. The results of clinical studies of radiopharmaceuticals based on affibody molecules, ADAPTs, and DARPins for SPECT and PET have demonstrated good tolerability of the compounds, their rapid excretion from the body, and the possibility to differentiate tumor sites depending on the HER2/neu status. This indicates that targeted radionuclide diagnosis holds promise and the need to continue research in this direction.

Представленный обзор посвящен «клинической» эволюции радионуклидной диагностики HER2-позитивного рака молочной железы с использованием в качестве «нацеливающего» модуля различных структур – от «полноразмерных» антител до новой группы синтетических белков небольшого размера – альтернативных каркасных белков. Эта тематика особенно актуальна в связи с существующими проблемами выявления злокачественных опухолей молочной железы с гиперэкспрессией HER2/neu, что во многих случаях ведет к назначению неадекватного системного лечения у пациентов этой категории. Результаты клинических исследований радиофармпрепаратов на основе молекул аффибоди, адаптов и дарпинов для ОФЭКТ и ПЭТ продемонстрировали их хорошую переносимость, быстрое выведение из организма и возможность дифференцировки опухолевых очагов в зависимости от статуса рецептора эпидермального фактора роста HER2/neu, что свидетельствует о перспективности таргетной радионуклидной диагностики и необходимости продолжения исследований в данном направлении.

breast cancerHER2/neuradionuclide diagnosticsmonoclonal antibodyalternative scaffold proteinsрак молочной железыHER2/neuрадионуклидная диагностикамоноклональное антителоальтернативные каркасные белкиМинистерство науки и высшего образования Российской ФедерацииMinistry of Science and Higher Education of the Russian Federation075-15-2022-1103The work was carried out within the framework of the grant of the Ministry of Science and Higher Education Agreement No. 075-15-2019-1925 on the topic "Development of target molecules based on scaffold proteins for the diagnosis and therapy of malignant neoplasms: theranostic approach".Работа выполнена в рамках гранта Министерства науки и высшего образования соглашение № 075-15-2019-1925 по теме "Разработка таргетных молекул на основе каркасных белков для диагностики и терапии злокачественных новообразований: тераностический подход".Kaprin A.D., Starinskii V.V., Petrova G.V. Malignant tumours in Russian Federation in 2019 (disease and mortality) M.: P.A. Herzen Moscow State Medical Research Institute – branch of the Federal State Budgetary Institution “NMIRC” of the Ministry of Health of Russia, 2020. 251 p.Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2019 году (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России, 2020. 251 с.Lambertini M., Viglietti G. // Oncotarget. 2019. V. 10. № 8. P. 803–804. doi: 10.18632/oncotarget.26611Bray F., Ferlay J., Soerjomataram I., Siegel R.L., Torre L.A., Jemal A. // CA Cancer J. Clin. 2018. V. 68. № 6. P. 394–424. doi: 10.3322/caac.21492Cardoso F., Kyriakides S., Ohno S., Penault-Llorca F., Poortmans P., Rubio I.T., Zackrisson S., Senkus E. // Ann. Oncol. 2019. V. 30. № 8. P. 1194–1220. doi: 10.1093/annonc/mdz173Carioli G., Malvezzi M., Rodriguez T., Bertuccio P., Negri E., Vecchia C. // Breast. 2017. V. 36. P. 89–95. doi: 10.1016/j.breast.2017.06.003Sachdev J.C., Sandoval A.C., Jahanzeb M. // Cancer Treat. Res. 2019. V. 178. P. 45–80. doi: 10.1007/978-3-030-16391-4_2Arranja A.G., Pathak V., Lammers T., Shi Y. // Pharmacol. Res. 2017. V. 115. P. 87–95. doi: 10.1016/j.phrs.2016.11.014Navalkissoor S., Gnanasegaran G., Baum R. // Br. J. Radiol. 2018. V. 91. № 1091. P. 20189004. doi: 10.1259/bjr.20189004Turner J.H. // Br. J. Radiol. 2018. V. 91. № 1091. P. 20180440. doi: 10.1259/bjr.20180440Langbein T., Weber W.A., Eiber M. // J. Nucl. Med. 2019. V. 60. № 9 (Suppl. 2). P. 13S–19S. doi:10.2967/jnumed.118.220566Lymperopoulos G., Lymperopoulos P., Alikari V., Dafogianni C., Zyga S., Margari N. // Adv. Exp. Med. Biol. 2017. V. 989. P. 119–128. doi: 10.1007/978-3-319-57348-9_10Wiesing U. // Med. Hlth Care Philos. 2019. V. 22. № 4. P. 593–597. doi: 10.1007/s11019-019-09898-3Wiesing U. // Med. Hlth Care Philos. 2019. V. 22. № 4. P. 593–597. doi: 10.1007/s11019-019-09898-3.Duffy M.J., Harbeck N., Nap M., Molina R., Nicolini A., Senkus E., Cardoso F. // Eur. J. Cancer. 2017. V. 75. P. 284–298. doi: 10.1016/j.ejca.2017.01.017Nagini S. // Anticancer Agents Med. Chem. 2017. V. 17. P. 152–163. doi: 10.2174/1871520616666160502122724Broughton M.N., Westgaard A., Paus E., Øijordsbakken M., Henanger K.J., Naume B., Bjoro T. // Tumour Biol. 2017. V. 39. № 6. P. 1010428317707436. doi: 10.1177/1010428317707436Han L., Li L., Wang N., Xiong Y., Li Y., Gu Y. // Interferon Cytokine Res. 2018. V. 38. № 12. P. 578–582. doi: 10.1089/jir.2018.0085Ahn S., Woo J.W., Lee K., Park S.Y. // J. Pathol. Transl. Med. 2020. V. 54. № 1. P. 34–44. doi: 10.4132/jptm.2019.11.03Schwill M., Tamaskovic R., Gajadhar A.S., Kast F., White F.M., Pluckthun A. // Sci. Signal. 2019. V. 12. № 565. P. eaau2875. doi: 10.1126/scisignal.aau2875Pareek A., Singh O.P., Yogi V., Ghori H.U., Tiwari V., Redhu P. // Cancer Res. Ther. 2019. V. 15. № 5. P. 971–975. doi: 10.4103/jcrt.JCRT_235_18Waks A.G., Winer E.P. // J. Am. Med. Assoc. 2019. V. 321. № 3. P. 288–300. doi: 10.1001/jama.2018.19323Slamon D.J., Clark G.M., Wong S.G., Levin W.J., Ullrich A., McGuire W.L. // Science. 1987. V. 235. № 4785. P. 177–182. doi: 10.1126/science.3798106Marshall D.A., Ferrusi I.L., Trudeau M., Leighl N.B., Hoch J.S., Grazziotin L.R., Khong H., Pullenayegum E., Earle G.C. // J. Oncol. Pharm. Pract. 2020. V. 26. № 2. P. 379–385. doi: 10.1177/1078155219850299Pernas S., Tolaney S.M. // Ther. Adv. Med. Oncol. 2019. V. 11. P. 1758835919833519. doi: 10.1177/1758835919833519Tsai Y.F., Tseng L.M., Lien P.J., Hsu C., Lin Y., King K., Wang Y., Chao T., Liu C., Chiu J., et al. // Histopathology. 2019. V. 74. № 4. P. 578–586. doi: 10.1111/his.13801Stewart R.L., Caron J.E., Gulbahce E.H., Factor R.E., Geiersbach K.B., Downs-Kelly E. // Mod. Pathol. 2017. V. 30. № 11. P. 1561–1566. doi: 10.1038/modpathol.2017.65Agersborg S., Mixon C., Nguyen T., Aithal S., Sudarsanam S., Blocker F., Weiss L., Gasparini R., Jiang S., Chen W., et al. // Breast Cancer Res. Treat. 2018. V. 170. № 2. P. 321–328. doi: 10.1007/s10549-018-4755-5Bo W., Ding W., Sun K., Wang X., Xu L., Teng X.// Sci. Rept. 2019. V. 9. P. 16726. doi: 10.1038/s41598-019-53003-wFurerr D., Jacobs S., Caron C., Sanschagrin F., Provencher L., Diorio C. // Anticancer Res. 2017. V. 37. P. 3323–3329. doi: 10.21873/anticanres.11701Schrijver W., Suijkerbuijk K.P.M., van Gils C.H., van der Wall E., Moelans C.B., van Diest P.J. // J. Natl. Cancer Inst. 2018. V. 110. № 6. P. 568–580. doi: 10.1093/jnci/djx273Kroigard A.B., Larsen M.J., Thomassen M., Kruze T.A. // Breast J. 2016. V. 22. № 4. P. 420–430. https://doi.org/10.1111/tbj.12596Kroigard A.B., Larsen M.J., Thomassen M., Kruze T.A. // Breast J. 2016. V. 22. № 4. P. 420–430. doi: 10.1111/tbj.12596Raica M., Cimpean A.M., Ceasu R.A., Fulga V., Nica C., Rudico L., Sapefrati L. // Anticancer Res. 2014. V. 34. P. 1435–1440.Lower E.E., Khan S., Kennedy D., Baughman R.P. // Breast Cancer – Targets and Therapy. 2017. V. 9. P. 515–520. doi: 10.2147/BCTT.S137709Turner N.H., Di Leo A. // Cancer Treat. Rev. 2013. V. 39. № 8. P. 947–957. doi: 10.1016/j.ctrv.2013.05.003Griguolo G., Pascual T., Dieci M.V., Guarneri V., Prat A. // J. Immunother. Cancer. 2019. V. 7. № 1. P. 90. doi.org/10.1186/s40425-019-0548-6Griguolo G., Pascual T., Dieci M.V., Guarneri V., Prat A. // J. Immunother. Cancer. 2019. V. 7. № 1. P. 90. doi: 0.1186/s40425-019-0548-6Ocaña A., Amir E., Pandiella A. // Breast Cancer Res. 2020. V. 22. № 1. P. 15. doi: 10.1186/s13058-020-1252-7Muller K., Marotti J., Tafe L. // Am. J. Clin. Pathol. 2019. V. 152. № 1. P. 10. doi: 10.1093/ajcp/aqz010Pekar G., Kasselaki I., Pekar-Lukacs A., Dekany C., Hellberg D., Tot T. // Histopathology. 2019. V. 74. № 2. P. 300–310. doi: 10.1111/his.13733Jadvar H., Chen X., Cai W., Mahmood U. // Radiology. 2018. V. 286. № 1. P. 388–400. doi: 10.1148/radiol.2017170346Stéen E.J.L., Edem P.E., Nørregaard K., Jorgensen J.T., Shalgunov V., Kjaer A., Herth M.M. // Biomaterials. 2018. V. 179. P. 209–245. doi: 10.1016/j.biomaterials.2018.06.021Li L., Wu Y., Wang Z., Jia B., Hu Z., Dong C., Wang F. // J. Nucl. Med. 2017. V. 58. P. 821–826. doi: 10.2967/jnumed.116.183863Ljungberg M., Pretorius P.H. // Br. J. Radiol. 2018. V. 91. № 1081. P. 20160402. doi: 10.1259/bjr.20160402Massicano A.V.F., Marquez-Nostra B.V., Lapi S.E. // Mol. Imaging. 2018. V. 17. P. 1–11.Gallivanone F., Valente M., Savi A., Canevari C., Castiglioni I. // Front. Biosci. (Landmark Ed). 2017. V. 22. P. 1750–1759. doi: 10.2741/4569Pandit-Taskar N.J. // Med. Imaging Radiat. Sci. 2019. V. 50. № 4 (Suppl. 1). P. 41–44. https://doi.org/10.1016/j.jmir.2019.07.006Tolmachev V., Orlova A., Sorensen J. // Semin Cancer Biol. 2021. V. 72. P. 185–197. doi: 10.1016/j.semcancer.2020.10.005Garousi J., Orlova A., Freid F.Y., Tolmachev V. // EJNMMI Radiopharmacy Chem. 2020. V. 5. P. 16. doi: 10.1186/s41181-020-00094-wHanack K., Messerschmidt K., Listek M. // Adv. Exp. Med. Biol. 2016. V. 917. P. 11–22. doi: 10.1007/978-3-319-32805-8_2Ovacik M., Lin K. // Clin. Transl. Sci. 2018. V. 11. № 6. P. 540–552. doi: 10.1111/cts.12567Mueller C., Haymond A., Davis J.B., Williams A., Espina V. // Expert Rev. Proteomics. 2018. V. 15. № 2. P. 131–152. doi: 10.1080/14789450.2018.1421071Gebhart G., Flamen P., DeVries E.G.E., Jhaveri K., Wimana Z. // J. Nucl. Med. 2016. V. 57. № 2 (Suppl. 1). P. 81S–88S. doi 10.2967/jnumed.115.157941Behr T.M., Behe M., Wormann B. // N. Engl. J. Med. 2001. V. 345. № 13. P. 995–996. doi: 10.1056/NEJM200109273451312Perik P.J., Hooge M.L., Gietema J.A., Graaf W.T., Korte M.A., Jonkman S., Kosterink J.G., Veldhuisen D.J., Sleifer D.T., et al. // J. Clin. Oncol. 2006. V. 20. № 15. P. 2276–2282.Sietske B.M., de Jong J., Perik P.J., Brouwers H., Schroder C.P., Munnink T., Bongaerts A.H.H., de Vries E.G.E., Hooge M.N. // Mol. Imaging. 2014. V. 13. P. 1–6. doi: 10.2310/7290.2014.00011Dijekers E.C., Munnik T.H., Kosterink J.G., Brouwers A.H., Jager P.L., Jong J.R., Dongen G.A., Schroder C.P., Hooge M.N., Vries E.G. // Clin. Pharmacol. Ther. 2010. V. 87. № 5. P. 586–592. doi: 10.1038/clpt.2010.12Ulaner G.A., Hyman D.M., Lyashchenko S.K., Lewis J.S., Carrasquillo J.A. // Clin. Nucl. Med. 2017. V. 42. P. 912–917. doi: 10.1097/RLU.0000000000001820Gebhart G., Lamberts L.E., Wimana Z., Garcia C., Emonts P., Ameye L., Stroobants S., Huizing M., Aftimos P., Tol J., et al. // Ann. Oncol. 2016. V. 27. № 4. P. 619–624. doi: 10.1093/annonc/mdv577Tamura K., Kurihara H., Yonemori K., Tsuda H., Suzuki J., Kona Y., Honda N., Kodaira M., Yamamoto H., Yunokawa M., et al. // J. Nucl. Med. 2013. V. 54. № 11. P. 1869–1875. doi: 10.2967/jnumed.112.118612Mortimer J.E., Balding J.R., Colcher D.M., Conti P.S., Frankel P.H., Carrol M.I., Tong S., Poku E., Miles J.K., Shively J.E., et al. // J. Nucl. Med. 2014. V. 55. № 1. P. 23–29. doi: 10.2967/jnumed.113.122630Beylergil V., Morris P.G., Smith-Jones P.M., Modi S., Solit D., Hudis C.A., Lu Y., O`Donoghue J., Lyashchenko S.K., Carrasquillo J.A., et al. // Nucl. Med. Commun. 2013. V. 34. № 12. P. 1157–1165 doi: 10.1097/MNM.0b013e328365d99bBeylergil V., Morris P.G., Smith-Jones P.M., Modi S., Solit D., Hudis C.A., Lu Y., O`Donoghue J., Lyashchenko S.K., Carrasquillo J.A., et al. // Nucl. Med. Commun. 2013. V. 34. № 12. P. 1157–1165. doi: 10.1097/MNM.0b013e328365d99bKeyaerts M., Xavier C., Heemskerk J., Devoogdt N., Evaraert H., Ackaert C., Vanhoeij M., Duhoux F.P., Gevaert T., Simon P., et al. // J. Nucl. Med. 2016. V. 57. № 1. P. 27–33. doi: 10.2967/jnumed.115.162024Baum R.P., Prasad V., Muller D., Schuchardt C., Orlova A., Wennborg A., Tolmachev V., Feldwisch J. // J. Nucl. Med. 2010. V. 51. № 6. P. 892–897. doi: 10.2967/jnumed.109.073239.Sorensen J., Sandberg D., Sandstrom M., Wennborg A., Feldwisch J., Tolmachev V., Astrom G., Lubberink M., Garske-Roman U., Carlsson J., Lindman H. // J. Nucl. Med. 2014. V. 55. № 5. P. 730–735. doi: 10.2967/jnumed.113.131243Sandstrom M., Lindskog K., Velikyan I., Wennborg A., Feldwisch J., Sandberg D., Tolmachev V., Orlova A., Sorensen J., Carlson J., et al. // J. Nucl. Med. 2016. V. 57. № 6. P. 86–71. doi: 10.2967/jnumed.115.169342Sandström M., Lindskog K., Velikyan I., Wennborg A., Feldwisch J., Sandberg D., Tolmachev V., Orlova A., Sorensen J., Carlson J., et al. // J. Nucl. Med. 2016. V. 57. № 6. P. 86–71. doi: 10.2967/jnumed.115.169342Sorensen J., Velikyan I., Sandberg D., Wennborg A., Feldwisch., Tolmachev V., Orlova A., Sandstrom M., Lubberink M., Olofsson H., Carlsson J., et al. // Theranostics. 2016. V. 6. № 2. P. 262–271. doi: 10.7150/thno.13502Sandberg D., Tolmachev V., Velikyan I., Olofsson H., Wennborg A., Feldwisch J., Carlsson J., Lindman H., Sorensen J. // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2017. V. 44. P. 1337–1346. doi: 10.1007/s00259-017-3650-3Bragina O., von Witting E., Garousi J., Zelchan R., Sandstrom M., Orlova A., Medvedeva A., Doroshenko A., Vorobyeva A., Lindbo S., et al. // J. Nucl. Med. 2021. V. 62. № 4. P. 493–499. doi: 10.2967/jnumed.120.248799Bragina O., Chernov V., Schulga A., Konovalova E., Garbukov E., Vorobyeva A., Orlova A., Tashireva L., Sorensen J., Zelchan R., et al. // J. Nucl. Med. 2021. V. 63. № 4. P. 528–535. doi: 10.2967/jnumed.121.262542Bragina O., Chernov V., Schulga A., Konovalova E., Garbukov E., Vorobyeva A., Orlova A., Tashireva L., Sorensen J., Zelchan R., et al. // J. Nucl. Med. 2021. V. 63. № 4. P. 528–535. doi: jnumed.121.262542. doi: 10.2967/jnumed.121.262542Sivelle C., Sierocki R., Ferreira-Pinto K., Simon S., Maillere B., Nozach H. // MAbs. 2018. V. 10. № 5. P. 720–729. doi: 10.1080/19420862.2018Gebauer M., Skerra A. // Curr. Opin. Biotechnol. 2019. V. 60. P. 230–241. doi:10.1016/j.copbio.2019.05.007Gebauer M., Skerra A. // Curr. Opin. Biotechnol. 2019. V. 60. P. 230–241. doi: 10.1016/j.copbio.2019.05.007Yang E.Y., Shan K. // Front. Oncol. 2020. V. 10. P. 1182. doi: 10.3389/fonc.2020.01182Kijanka M., Dorresteijin B., Oliveira S., van Bergen P.M.P. // Nanomedicine. 2015. V. 10. №. 1. P. 161–174. doi: 10.2217/nnm.14.178Kijanka M., Dorresteijin B., Oliveira S., van Bergen P.M.P. // Nanomedicine. 2015. V. 10. № 1. P. 161–174. doi: 10.2217/nnm.14.178Keyaerts M., Xavier C., Everaet H., Vaneycken I., Fontaine C., Decoster L., Vanhoeij M., Cavelier V., Lahoutte T. // Ann. Oncol. 2019. V. 30. Suppl. 3. P. III25–III26. doi: 10.1093/annonc/mdz095.081Shipunova V.O., Deyev S.M. // Acta Naturae. 2022. V. 14. № 1(52). P. 54–72. doi: 10.32607/actanaturae.11545Шипунова В.О., Деев С.М. // Acta Naturae. 2022. T. 14. № 1(52). C. 54–72. doi: 10.32607/actanaturae.11545Martin H.L., Bedford R., Heseltine S.J., Tang A.A., Haza K.Z., Rao A., Mcpherson M.J., Tomlinson D.C. // Biotechnol. 2018. V. 45. P. 28–35. https://doi.org/10.1016/j.nbt.2018.02.008Krasniqi A., D’Huyvetter M., Devoogdt N., Frejd F.Y., Sorensen J., Orlova A., Keyaerts M., Tolmachev V. // J. Nucl. Med. 2018. V. 59. P. 885–891. doi: 10.2967/jnumed.117.199901Bragina O.D., Chernov V.I., Zeltchan R.V., Sinilkin I.G., Medvedeva A.A., Larkina M.S. // Bulletin of Siberian Medicine. 2019. V. 18. № 3. P. 125–133. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-3-125-133Брагина О.Д., Чернов В.И., Зельчан Р.В., Синилкин И.Г., Медведева А.А., Ларькина М.С. // Бюл. сиб. мед. 2019. Т. 18. № 3. С. 125–133. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-3-125-133Tolmachev V., Tran T.A., Rosik D., Sjoberg A., Abrahmsen L. Orlova A. // J. Nucl. Med. 2012. V. 53. P. 953–960. doi: 10.2967/jnumed.111.101527Tolmachev V., Gronroos T.J., Yim C.B., Garosi J., Yue Y., Grimm S., Rajander J., Perols A., Haaparanta-Solin M., Solin O., Ferdani R., Orlova A., Anderson C.J., Karlstrom A.E. // Sci. Rep. 2018. V. 8. P. 6542. doi:10.1038/s41598-018-24785-2Tolmachev V., Gronroos T.J., Yim C.B., Garosi J., Yue Y., Grimm S., Rajander J., Perols A., Haaparanta-Solin M., Solin O., Ferdani R., Orlova A., Anderson C.J., Karlstrom A.E. // Sci. Rep. 2018. V. 8. P. 6542. doi: 10.1038/s41598-018-24785-2Xu Y., Wang L., Pan D., Yu C., Mi B., Huang Q., Sheng J., Yan J., Wang X., Yang R., Yang M. // Br. J. Radiol. 2019. V. 92. № 1104. P. 20190425. doi: 10.1259/bjr.20190425Garousi J., Lindbo S., Borin J., von Witting E., Vorobyeva A., Oroujeni M., Mitran B., Orlova A., Buijs J., Tolmachev V., et al. // Eur. J. Pharm. Biopharm. 2019. V. 134. P. 37–48. doi: 10.1016/j.ejpb.2018.11.004von Witting E., Garousi J., Lindbo S., Vorobyeva A., Altai M., Oroujeni M., Mitran B., Orlova A., Hober S., Tolmachev V. // Eur. J. Pharm. Biopharm. 2019. V. 140. P. 109–120. doi: 10.1016/j.ejpb.2019.05.008Bragina O.D., Chernov V.I., Garbukov E.Yu., Doroshenko A.V., Vorobyeva A.G., Orlova A.M., Tolmachev V.M. // Bulletin of Siberian Medicine. 2021. V. 20. № 1. P. 23–30. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2021-1-23-30Брагина О.Д., Чернов В.И., Гарбуков Е.Ю., Дорошенко А.В., Воробьева А.Г., Орлова А.М., Толмачев В.М. // Бюл. сиб. мед. 2021. Т. 20. № 1. С. 23–30. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2021-1-23-30Plückthun A. // Annu Rev. Pharmacol. Toxicol. 2015. V. 55. P. 489–511. doi: 10.1146/annurev-pharmtox-010611-134654Stumpp M.T., Dawson K.M., Binz H.K. // BioDrugs. 2020. V. 34. № 4. P. 423–433. doi: 10.1007/s40259-020-00429-8Shilova O.N., Deyev S.M. // Acta Naturae. 2019. V. 11. № 4. P. 42–53. doi: 10.32607/20758251-2019-11-4-42-53Vorobyeva A., Garousi J., Tolmachev V., Shulga A., Konavalova E., Deyev S., Gulr R., Lofblom J., Sandstrom M., Chernov V., et al. // Sci. Rept. 2019. V. 9. № 1. P. 9405. doi: 10.1038/s41598-019-45795-8Vorobyeva A., Bragina O., Altai M., Mitran B., Orlova A., Shulga A., Proshkina G., Chernov V., Tolmachev V., Deyev S. // Contrast Media Mol. Imaging. 2018. V. 2018. P. 6930425. doi: 10.1155/2018/6930425Tolmachev V.M., Chernov V.I., Deyev S.M. // Rus. Chem. Rev. 2022. V. 91. RCR5034. https://doi.org/10.1070/RCR5034