Acta NaturaeActa NaturaeActa Naturae2075-8251Acta Naturae Ltd1118010.32607/actanaturae.11180ReviewsОбзорыResearch ArticlePhotoluminescent Nanomaterials for Medical BiotechnologyФотолюминесцентные наноматериалы для медицинской биотехнологииGuryevEvgenii L.ГурьевЕвгений Леонидович
Russian Federation
eguryev@ibbm.unn.ruShanwarSamahШанварСамах
Russian Federation
samahshanwar@googlemail.comZvyaginAndrei VasilevichЗвягинАндрей Васильевич
Russian Federation
andrei.zvyagin@mq.edu.auDeyevSergey M.ДеевСергей Михайлович
Russian Federation
biomem@mail.ruBalalaevaIrina V.БалалаеваИрина Владимировна
Russian Federation
irin-b@mail.ruLobachevsky State University of Nizhny NovgorodНижегородский государственный университет им. Н.И. ЛобачевскогоShemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry, Russian Academy of SciencesИнститут биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАНI. M. Sechenov First Moscow State Medical UniversityПервый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России1506202113216313008202012102020Copyright ©; 2021, Guryev E.L., Shanwar S., Zvyagin A.V., Deyev S.M., Balalaeva I.V.Copyright ©; 2021, Гурьев Е.Л., Шанвар С., Звягин А.В., Деев С.М., Балалаева И.В.2021Guryev E.L., Shanwar S., Zvyagin A.V., Deyev S.M., Balalaeva I.V.Гурьев Е.Л., Шанвар С., Звягин А.В., Деев С.М., Балалаева И.В.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://actanaturae.ru/2075-8251/article/view/11180

Creation of various photoluminescent nanomaterials has significantly expanded the arsenal of approaches used in modern biomedicine. Their unique photophysical properties can significantly improve the sensitivity and specificity of diagnostic methods, increase therapy effectiveness, and make a theranostic approach to treatment possible through the application of nanoparticle conjugates with functional macromolecules. The most widely used nanomaterials to date are semiconductor quantum dots; gold nanoclusters; carbon dots; nanodiamonds; semiconductor porous silicon; and up-conversion nanoparticles. This paper considers the promising groups of photoluminescent nanomaterials that can be used in medical biotechnology: in particular, for devising agents for optical diagnostic methods, sensorics, and various types of therapy.

Создание разнообразных наноматериалов, обладающих фотолюминесцентными свойствами, существенно расширило арсенал подходов, применяемых в современной биомедицине. Уникальные фотофизические свойства таких материалов позволяют существенно улучшить чувствительность и специфичность диагностических методов, повысить эффективность терапии, а также дают возможность применять тераностический подход к лечению с использованием конъюгатов наночастиц с функциональными макромолекулами. Наиболее широкое применение получили такие наноматериалы, как полупроводниковые квантовые точки, малые кластеры золота, углеродные точки, наноалмазы, полупроводниковые наночастицы пористого кремния и антистоксовые нанофосфόры. Нами рассмотрены перспективные группы фотолюминесцентных наноматериалов как основы для биотехнологического использования, в частности, для разработки агентов для оптических методов диагностики, сенсорики и различных видов терапии.

photoluminescent nanomaterialsbiotechnological applicationoptical diagnostics and therapychemical sensorsquantum dotsgold clusterscarbon dotsnanodiamondsporous siliconup-conversion nanoparticlesфотолюминесцентные наноматериалыбиотехнологическое применениеоптическая диагностика и терапияхимические сенсорыквантовые точкикластеры золотауглеродные точкинаноалмазыпористый кремнийантистоксовые нанофосфорыРФФИRFBR grant19-14-50575This work was supported by the Russian Fund for Basic Research (project 19-14-50575)Работа выполнена при финансовой поддержке PФФИ (проект 19-14-50575).Dykman L.A., Khlebtsov N.G. // Biomaterials. 2016. V. 108. P. 13–34. doi: 10.1016/j.biomaterials.2016.08.040Singh P., Pandit S., Mokkapati V.R.S.S., Garg A., Ravikumar V., Mijakovic I. // Int. J. Mol. Sci. 2018. V. 19. № 7. P. 1979. doi: 10.3390/ijms19071979Azharuddin M., Zhu G.H., Das D., Ozgur E., Uzun L., Turner A.P.F., Patra H.K. // Chem. Commun. (Camb.). 2019. V. 55. № 49. P. 6964–6996. doi: 10.1039/c9cc01741kChan W.C., Maxwell D.J., Gao X., Bailey R.E., Han M., Nie S. // Curr. Opin. Biotechnol. 2002. V. 13. № 1. P. 40–46. doi: 10.1016/s0958-1669(02)00282-3Watson A., Wu X., Bruchez M. // Biotechniques. 2003. V. 34. № 2. P. 296–300. doi: 10.2144/03342bi01Pleskova S., Mikheeva E., Gornostaeva E. // Adv. Exp. Med. Biol. 2018. V. 1048. P. 323–334. doi: 10.1007/978-3-319-72041-8_19Ozkan M. // Drug Discov. Today. 2004. V. 9. № 24. P. 1065–1071. doi: 10.1016/S1359-6446(04)03291-XGao X., Yang L., Petros J.A., Marshall F.F., Simons J.W., Nie S. // Curr. Opin. Biotechnol. 2005. V. 16. № 1. P. 63–72. doi: 10.1016/j.copbio.2004.11.003Wen L., Qiu L., Wu Y., Hu X., Zhang X. // Sensors. 2017. V. 17. P. 1736. doi: 10.3390/s17081736Mansur H.S. // WIREs Nanomed. Nanobiotechnol. 2010. V. 2. P. 113–129. doi: 10.1002/wnan.78Kutova O.M., Guryev E.L., Sokolova E.A., Alzeibak R., Balalaeva I.V. // Cancers. 2019. V. 11. P. 68. doi: 10.3390/cancers11010068Cai W., Shin D.-W., Chen K., Gheysens O., Cao Q., Wang S.X., Gambhir S.S., Chen X. // Nano Lett. 2006. V. 6. № 4. P. 669–676. doi: 10.1021/nl052405tHines M.A., Guyot-Sionnest P. // J. Phys. Chem. 1996. V. 100. P. 468–471. doi: 10.1021/jp9530562Parra G.G., Ferreira L.P., Gonçalves P.J., Sizova S.V., Oleinikov V.A., Morozov V.N., Kuzmin V.A., Borissevitch I.E. // Nanoscale Res. Lett. 2018. V. 13. № 1. P. 40. doi: 10.1186/s11671-018-2449-xWegner K.D., Dussert F., Truffier-Boutry D., Benayad A., Beal D., Mattera L., Ling W.L., Carrière M., Reiss P. // Front. Chem. 2019. V. 7. P. 466. doi: 10.3389/fchem.2019.00466Baláž P., Baláž M., Dutková E., Zorkovská A., Kováč J., Hronec P., Kováč J.Jr, Čaplovičová M., Mojžiš J., Mojžišová G. et al. // Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2016. V. 58. P. 1016–1023. doi: 10.1016/j.msec.2015.09.040Baláž P., Baláž M., Dutková E., Zorkovská A., Kováč J., Hronec P., Kováč J.Jr, Čaplovičová M., Mojžiš J., Mojžišová G., et al. // Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2016. V. 58. P. 1016–1023. doi: 10.1016/j.msec.2015.09.040Modlitbová P., Pořízka P., Novotný K., Drbohlavová J., Chamradová I., Farka Z., Zlámalová-Gargošová H., Romih T., Kaiser J. // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2018. V. 153. P. 23–31. doi: 10.1016/j.ecoenv.2018.01.044Wageh S., Maize M., Donia A.M., Al-Ghamdi A.A., Umar A. // J. Nanosci. Nanotechnol. 2015. V. 15. № 12. P. 9861–9867. doi: 10.1166/jnn.2015.10346Pellegrino T., Manna L., Kudera S., Liedl T., Koktysh D., Rogach A.L., Keller S., Radler J., Natile G., Parak W.J. // Nano Lett. 2004. V. 4. P. 703–707. doi: 10.1021/nl035172jTomczak N., Liu R., Vancso J.G. // Nanoscale. 2013. V. 5. № 24. P. 12018–12032. doi: 10.1039/c3nr03949hGoftman V.V., Aubert T., Ginste D.V., Van Deun R., Beloglazova N.V., Hens Z., De Saeger S., Goryacheva I.Y. // Biosens. Bioelectron. 2016. V. 79. P. 476–481. doi: 10.1016/j.bios.2015.12.079Goftman V.V., Aubert T., Ginste D.V., van Deun R., Beloglazova N.V., Hens Z., De Saeger S., Goryacheva I.Y. // Biosens. Bioelectron. 2016. V. 79. P. 476–481. doi: 10.1016/j.bios.2015.12.079Foubert A., Beloglazova N.V., Rajkovic A., Sas B., Madder A., Goryacheva I.Y., De Saeger S. // Trends Anal. Chem. 2016. V. 83. P. 31–48. doi: 10.1016/j.trac.2016.07.008Rousserie G., Sukhanova A., Even-Desrumeaux K., Fleury F., Chames P., Baty D., Oleinikov V., Pluot M., Cohen J.H., Nabiev I. // Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2010. V. 74. № 1. P. 1–15. doi: 10.1016/j.critrevonc.2009.04.006Durr N.J., Larson T., Smith D.K., Korgel B.A., Sokolov K., Ben-Yakar A. // Nano Lett. 2007. V. 7. P. 941–945. doi: 10.1021/nl062962vMedintz I.L., Uyeda H.T., Goldman E.R., Mattoussi H. // Nat. Mater., 2005. V. 4. № 6. P. 435–446. doi: 10.1038/nmat1390Medintz I.L., Uyeda H.T., Goldman E.R., Mattoussi H. // Nat. Mater. 2005. V. 4. № 6. P. 435–446. doi: 10.1038/nmat1390Smith A., Duan H., Mohs A., Nie S. // Adv. Drug Del. Rev., 2008. V. 60. № 11. P. 1226–1240. doi: 10.1016/j.addr.2008.03.015Smith A., Duan H., Mohs A., Nie S. // Adv. Drug Del. Rev. 2008. V. 60. № 11. P. 1226–1240. doi: 10.1016/j.addr.2008.03.015Sperling R.A., Parak W.J. // Philos. Trans. R. Soc. A. Math. Phys. Eng. Sci. 2010. V. 368. № 1915. P. 1333–1383. doi: 10.1098/rsta.2009.0273Sukhanova A., Venteo L., Devy J., Artemyev M., Oleinikov V., Pluot M., Nabiev I. // Lab. Invest. 2002. V. 82. P. 1259–1261. doi: 10.1097/01.lab.0000027837.13582.e8Jiang W., Mardyani S., Fischer H., Chan W.C.W. // Chem. Mater. 2006. V. 18. P. 872–878. doi: 10.1021/cm051393+Yu Y., Duan S., He J., Liang W., Su J., Zhu J., Hu N., Zhao Y., Lu X. // Oncol. Rep. 2016. V. 36. № 2. P. 886-892. doi: 10.3892/or.2016.4866Yu Y., Duan S., He J., Liang W., Su J., Zhu J., Hu N., Zhao Y., Lu X. // Oncol. Rep. 2016. V. 36. № 2. P. 886–892. doi: 10.3892/or.2016.4866Tomlinson I.D., Kovtun O., Crescentini T.M., Rosenthal S.J. // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2019. V. 29. № 8. P. 959–964. doi: 10.1016/j.bmcl.2019.02.024Nikitin M.P., Zdobnova T.A., Lukash S.V., Stremovskiy O.A., Deyev S.M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010. V. 107. № 13. P. 5827–5832. doi: 10.1073/pnas.1001142107Zdobnova T.A., Dorofeev S.G., Tananaev P.N., Vasiliev R.B., Balandin T.G., Edelweiss E.F., Stremovskiy O.A., Balalaeva I.V., Turchin I.V., Lebedenko E.N. et al. // J. Biomed. Opt. 2009. V. 14. № 2. P. 021004. doi: 10.1117/1.3122775Zdobnova T.A., Dorofeev S.G., Tananaev P.N., Vasiliev R.B., Balandin T.G., Edelweiss E.F., Stremovskiy O.A., Balalaeva I.V., Turchin I.V., Lebedenko E.N., et al. // J. Biomed. Opt. 2009. V. 14. № 2. P. 021004. doi: 10.1117/1.3122775Zdobnova T.A., Stremovskiy O.A., Lebedenko E.N., Deyev S.M. // PLoS One. 2012. V. 7. № 10. e48248. doi: 10.1371/journal.pone.0048248Balalaeva I.V., Zdobnova T.A., Krutova I.V., Brilkina A.A., Lebedenko E.N., Deyev S.M. // J. Biophotonics. 2012. P. 1–8. doi: 10.1002/jbio.201200080Buranda T., Wu Y., Sklar L.A. // Methods Mol. Biol. 2011. V. 699. P. 67–84. doi: 10.1007/978-1-61737-950-5_4Kovtun O., Ross E.J., Tomlinson I.D., Rosenthal S.J. // Chem. Commun. (Camb.). 2012. V. 48. № 44. P. 5428–5430. doi: 10.1039/c2cc31951aSun J.Z., Chen C., Jiang G., Tian W.Q., Li Y., Sun S.R. // Int. J. Nanomedicine. 2014. V. 9. P. 1339–1346. doi: 10.2147/IJN.S58881Tang T., Zhang D.L. // Oncol. Lett. 2017. V. 13. № 5. P. 2937–2944. doi: 10.3892/ol.2017.5856Beloglazova N.V., Sobolev A.M., Tessier M.D., Hens Z., Goryacheva I.Y., De Saeger S. // Methods. 2017. V. 116. P. 141–148. doi: 10.1016/j.ymeth.2017.01.004Suzuki M., Udaka H., Fukuda T. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2017. V. 143. P. 110–115. doi: 10.1016/j.jpba.2017.05.014Dahan M., Lévi S., Luccardini C., Rostaing P., Riveau B., Triller A. // Science. 2003. V. 302. № 5644. P. 442–445. doi: 10.1126/science.1088525Lidke D.S., Nagy P., Heintzmann R., Arndt-Jovin D.J., Post J.N., Grecco H.E., Jares-Erijman E.A., Jovin T.M. // Nat. Biotech. 2004. V. 22. № 2. P. 198–203. doi: 10.1038/nbt929Madhankumar A.B., Mrowczynski O.D., Patel S.R., Weston C.L., Zacharia B.E., Glantz M.J., Siedlecki C.A., Xu L.C., Connor J.R. // Acta Biomater. 2017. V. 58. P. 205–213. doi: 10.1016/j.actbio.2017.06.002Echarte M.M., Bruno L., Arndt-Jovin D.J., Jovin T.M., Pietrasanta L.I. // FEBS Lett. 2007. V. 581. № 16. P. 2905–2913. doi: 10.1016/j.febslet.2007.05.041Arora N., Syed A., Sander S., Smith E.A. // Phys. Biol. 2014. V. 11. №6. P. 066001. doi: 10.1088/1478-3975/11/6/066001Arora N., Syed A., Sander S., Smith E.A. // Phys. Biol. 2014. V. 11. № 6. P. 066001. doi: 10.1088/1478-3975/11/6/066001Bailey D.M., Kovtun O., Rosenthal S.J. // Methods Mol. Biol. 2017. V. 1570. P. 165–177. doi: 10.1007/978-1-4939-6840-4_11Chang J.C., Rosenthal S.J. // ACS Chem. Neurosci. 2012. V. 3. № 10. P. 737–743. doi: 10.1021/cn3000845Efros A.L., Nesbitt D.J. // Nat. Nanotechnol. 2016. V. 11. № 8. P. 661–671. doi: 10.1038/nnano.2016.140Omogo B., Gao F., Bajwa P., Kaneko M., Heyes C.D. // ACS Nano. 2016. V. 10. № 4. P. 4072–4082. doi: 10.1021/acsnano.5b06994Thomas E.M., Ghimire S., Kohara R., Anil A.N., Yuyama K.I., Takano Y., Thomas K.G., Biju V. // ACS Nano. 2018. V. 12. № 9. P. 9060–9069. doi: 10.1021/acsnano.8b03010Susha A.S., Javier A.M., Parak W.J., Rogach A.L. // Colloids Surf. A. 2006. V. 281. P. 40–43. doi: 10.1016/j.colsurfa.2006.02.014Shang L., Zhang L., Dong S. // Analyst. 2009. V. 134. № 1. P. 107–113. doi: 10.1039/b812458bGeneralova A.N., Oleinikov V.A., Sukhanova A., Artemyev M.V., Zubov V.P., Nabiev I. // Biosens. Bioelectron. 2013. V. 39. № 1. P. 187–193. doi: 10.1016/j.bios.2012.07.030Zhang H., Zhang L., Liang R.P., Huang J., Qiu J.D. // Anal. Chem. 2013. V. 85. № 22. P. 10969–10976. doi: 10.1021/ac402496eKavosia B., Navaee A., Salimi A. // Luminescence. 2018. V. 204. P. 368–374. doi: 10.1016/j.jlumin.2018.08.012Patolsky F., Gill R., Weizmann Y., Mokari T., Banin U., Willner I. // J. Am. Chem. Soc. 2003. V. 125. № 46. P. 13918–13919. doi: 10.1021/ja035848cGuo Y., Sakonsinsiri C., Nehlmeier I., Fascione M.A., Zhang H., Wang W., Pöhlmann S., Turnbull W.B., Zhou D. // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2016. V. 55. № 15. P. 4738–4472. doi: 10.1002/anie.201600593Yang L.H., Ahn D.J., Koo E. // Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2016. V. 69. P. 625–630. doi: 10.1016/j.msec.2016.07.021Algar R.W., Tavares A.J., Krull U.J. // Anal. Chim. Acta. 2010. V. 673. P. 1–25. doi: 10.1016/j.aca.2010.05.026Hu J., Wang Z.Y., Li C.C., Zhang C.Y. // Chem. Commun. (Camb.). 2017. V. 53. № 100. P. 13284–13295. doi: 10.1039/c7cc07752aLesiak A., Drzozga K., Cabaj J., Bański M., Malecha K., Podhorodecki A. // Nanomaterials (Basel). 2019. V. 9. № 2. P. E192. doi: 10.3390/nano9020192Cassette E., Helle M., Bezdetnaya L., Marchal F., Dubertret B., Pons T. // Adv. Drug. Deliv. Rev. 2013. V. 65. № 5. P. 719–731. doi: 10.1016/j.addr.2012.08.016Balalaeva I.V., Zdobnova T.A., Sokolova E.A., Deyev S.M. // Russ. J. Bioorganic Chem. 2015. V. 41. № 5. P. 536–542. doi: 10.1134/s1068162015050040Balalaeva I.V., Zdobnova T.A., Sokolova E.A., Deyev S.M. // Rus. J. Bioorganic Chem. 2015. V. 41. № 5. P. 536–542. doi: 10.1134/s1068162015050040Akerman M.E., Chan W.C.W., Laakkonen P., Bhatia S.N., Ruoslahti E. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. V. 99. № 20. P. 12617. doi: 10.1073/pnas.152463399Gao X., Cui Y., Levenson R.M., Chung L.W.K., Nie S. // Nat. Biotech. 2004. V. 22. № 8. P. 969–976. doi: 10.1038/nbt994Helle M., Cassette E., Bezdetnaya L., Pons T., Leroux A., Plénat F., Guillemin F., Dubertret B., Marchal F. // PLoS One. 2012. V. 7. № 8. e44433. doi: 10.1371/journal.pone.0044433Jeong S., Jung Y., Bok S., Ryu Y.M., Lee S., Kim Y.E., Song J., Kim M., Kim S.Y., Ahn G.O. et al. // Adv. Healthc. Mater. 2018. V. 7 № 2. e1800695. doi: 10.1002/adhm.201800695Jeong S., Jung Y., Bok S., Ryu Y.M., Lee S., Kim Y.E., Song J., Kim M., Kim S.Y., Ahn G.O., et al. // Adv. Healthc. Mater. 2018. V. 7 № 2. e1800695. doi: 10.1002/adhm.201800695Mangeolle T., Yakavets I., Lequeux N., Pons T., Bezdetnaya L., Marchal F. // Photodiagnosis Photodyn. Ther. 2019. V. 26. P. 150–156. doi: 10.1016/j.pdpdt.2019.03.010Si C., Zhang Y., Lv X., Yang W., Ran Z., Sun P. // J. Surg. Res. 2014. V. 192. № 2. P. 305–311. doi: 10.1016/j.jss.2014.07.028Bakalova R., Zhelev Z., Nikolova B., Murayama S., Lazarova D., Tsoneva I., Aoki I. // Gen. Physiol. Biophys. 2015. V. 34. № 4. P. 393–398. doi: 10.4149/gpb_2015007Wang H., Yang H., Xu Z.P., Liu X., Roberts M.S., Liang X. // Pharmaceutics. 2018. V. 10. № 4. P. E244. doi: 10.3390/pharmaceutics10040244Han H.S., Niemeyer E., Huang Y., Kamoun W.S., Martin J.D., Bhaumik J., Chen Y., Roberge S., Cui J., Martin M.R. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. V. 112. № 5. P. 1350–1355. doi: 10.1073/pnas.1421632111Han H.S., Niemeyer E., Huang Y., Kamoun W.S., Martin J.D., Bhaumik J., Chen Y., Roberge S., Cui J., Martin M.R., et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. V. 112. № 5. P. 1350–1355. doi: 10.1073/pnas.1421632111Zhang Z., Yuan Y., Liu Z., Chen H., Chen D., Fang X., Zheng J., Qin W., Wu C. // ACS Appl Mater. Interfaces. 2018. V. 10. № 32. P. 26928–26935. doi: 10.1021/acsami.8b08735Ipe B.I., Lehnig M., Niemeyer C.M. // Small. 2005. V. 1. № 7. P. 706–709. doi: 10.1002/smll.200500105.Shen Y., Sun Y., Yan R., Chen E., Wang H., Ye D., Xu J.J., Chen H.Y. // Biomaterials. 2017. V. 148. P. 31–40. doi: 10.1016/j.biomaterials.2017.09.026Savla R., Taratula O., Garbuzenko O., Minko T. // J. Control Release. 2011. V. 153. № 1, P. 16–22. doi: 10.1016/j.jconrel.2011.02.015Savla R., Taratula O., Garbuzenko O., Minko T. // J. Control. Release. 2011. V. 153. № 1. P. 16–22. doi: 10.1016/j.jconrel.2011.02.015Yang X., Zhang W., Zhao Z., Li N., Mou Z., Sun D., Cai Y., Wang W., Lin Y. // J. Inorg. Biochem. 2017. V. 167. P. 36–48. doi: 10.1016/j.jinorgbio.2016.11.023Zhu H., Zhang S., Ling Y., Meng G., Yang Y., Zhang W. // J. Control Release. 2015. V. 220 (Pt A). P. 529–544. doi: 10.1016/j.jconrel.2015.11.017Zhu H., Zhang S., Ling Y., Meng G., Yang Y., Zhang W. // J. Control. Release. 2015. V. 220 (Pt A). P. 529–544. doi: 10.1016/j.jconrel.2015.11.017Lin G., Chen T., Zou J., Wang Y., Wang X., Li J., Huang Q., Fu Z., Zhao Y., Lin M.C. et al. // Front. Pharmacol. 2017. V. 8. P. 182. doi: 10.3389/fphar.2017.00182Lin G., Chen T., Zou J., Wang Y., Wang X., Li J., Huang Q., Fu Z., Zhao Y., Lin M.C., et al. // Front. Pharmacol. 2017. V. 8. P. 182. doi: 10.3389/fphar.2017.00182Fan J., Sun Y., Wang S., Li Y., Zeng X., Cao Z., Yang P., Song P., Wang Z., Xian Z. et al. // Biomaterials. 2016. V. 78. P. 102–114. doi: 10.1016/j.biomaterials.2015.11.029Fan J., Sun Y., Wang S., Li Y., Zeng X., Cao Z., Yang P., Song P., Wang Z., Xian Z., et al. // Biomaterials. 2016. V. 78. P. 102–114. doi: 10.1016/j.biomaterials.2015.11.029Yong K.T., Law W.C., Hu R., Ye L., Liu L., Swihart M.T., Prasad P.N. // Chem. Soc. Rev. 2013. V. 42. № 3. P. 1236–1250. doi: 10.1039/c2cs35392jSharma V.K., McDonald T.J., Sohn M., Anquandah G.A.K., Pettine M., Zboril R. // Chemosphere. 2017. V. 188. P. 403–413. doi: 10.1016/j.chemosphere.2017.08.130Yang R.S., Chang L.W., Wu J.P., Tsai M.H., Wang H.J., Kuo Y.C., Yeh T.K., Yang C.S., Lin P. // Environ. Health. Perspect. 2007. V. 115. № 9. P. 1339–1343. doi: 10.1289/ehp.10290Fitzpatrick J.A., Andreko S.K., Ernst L.A., Waggoner A.S., Ballou B., Bruchez M.P. // Nano Lett. 2009. V. 9. № 7. P. 2736–2741. doi: 10.1021/nl901534qCarvalho S.M.D., Mansur A.A.P., Mansur H.S., Guedes M.I.M.C., Lobato Z.I.P., Leite M.F. // Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2017. V. 71. P. 412–424. doi: 10.1016/j.msec.2016.10.023Zheng J., Zhang C.W., Dickson R.M. // Phys. Rev. Lett. 2004. V. 93. P. 077402. doi: 10.1103/PhysRevLett.93.077402Palmal S., Jana N.R. // WIREs Nanomed. Nanobiotechnol. 2014. V. 6. № 1. P. 102–110. doi: 10.1002/wnan.1245Wen F., Dong Y., Feng L., Wang S., Zhang S., Zhang X. // Anal. Chem. 2011. V. 83. P. 1193–1196. doi: 10.1021/ac1031447Wang Y., Chen J.-T., Yan X.-P. // Anal. Chem. 2013. V. 85. P. 2529–2535. doi: 10.1021/ac303747tLiu M., Tang F., Yang Z., Xu J., Yang X. // J. Anal. Methods. Chem. 2019. 1095148. doi: 10.1155/2019/1095148El-Sayed I.H., Huang X., El-Sayed M.A. // Cancer Lett. 2006. V. 239. № 1. P. 129–135. doi: 10.1016/j.canlet.2005.07.035Chen D., Luo Z., Li N., Lee J.Y., Xie J., Lu J. // Adv. Funct. Mater. 2013. V. 23. P. 4324–4331. doi: 10.1002/adfm.201300411Xia F., Hou W., Zhang C., Zhi X., Cheng J., de la Fuente J.M., Song J., Cui D. // Acta Biomater. 2018. V. 68. P. 308–319. doi: 10.1016/j.actbio.2017.12.034Proshkina G., Deyev S., Ryabova A., Tavanti F., Menziani M.C., Cohen R., Katrivas L., Kotlyar A. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2019. V. 11. № 38. P. 34645–34651. doi: 10.1021/acsami.9b10441.Wang C., Wang Y., Xu L., Shi X., Li X., Xu X., Sun H., Yang B., Lin Q. // Small. 2013. V. 9. № 3. P. 413–420. doi: 10.1002/smll.201201849Deyev S., Proshkina G., Ryabova A., Tavanti F., Menziani M.C., Eidelshtein G., Avishai G., Kotlyar A. // Bioconjug. Chem. 2017. V. 28. №10. P. 2569–2574. doi: 10.1021/acs.bioconjchem.7b00410.Deyev S., Proshkina G., Ryabova A., Tavanti F., Menziani M.C., Eidelshtein G., Avishai G., Kotlyar A. // Bioconjug. Chem. 2017. V. 28. № 10. P. 2569–2574. doi: 10.1021/acs.bioconjchem.7b00410.Zhang W., Ye J., Zhang Y., Li Q., Dong X., Jianga H., Wang X. // RSC Adv. 2015. V. 5 № 78. P. 63821–63826. doi: 10.1039/C5RA11321KZhang W., Ye J., Zhang Y., Li Q., Dong X., Jianga H., Wang X. // RSC Adv. 2015. V. 5. № 78. P. 63821–63826. doi: 10.1039/C5RA11321KWang X., Cai X., Hu J., Shao N., Wang F., Zhang Q., Xiao J., Cheng Y. // J. Am. Chem. Soc., 2013. V. 135. № 26. P. 9805–9810. doi: 10.1021/ja402903hWang X., Cai X., Hu J., Shao N., Wang F., Zhang Q., Xiao J., Cheng Y. // J. Am. Chem. Soc. 2013. V. 135. № 26. P. 9805–9810. doi: 10.1021/ja402903hQin L., He X., Chen L., Zhang Y. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2015. V. 7. № 10. P. 5965–5971. doi: 10.1021/acsami.5b00269Chen Z., Qian S, Chen J., Cai J., Wu S., Cai Z. // Talanta. 2012. V. 94. P. 240–245. doi: 10.1016/j.talanta.2012.03.033Li W., Chen X. // Nanomedicine (Lond). 2015. V. 10. № 2. P. 299–320. doi: 10.2217/nnm.14.169Li W., Chen X. // Nanomedicine (London). 2015. V. 10. № 2. P. 299–320. doi: 10.2217/nnm.14.169Zhou Y., Tang L., Zeng G., Chen J., Wang J., Fan C., Yang G., Zhang Y., Xie X. // Biosens. Bioelectron. 2015. V. 65. P. 382–389. doi: 10.1016/j.bios.2014.10.063Wang H.H., Lin C.A.J., Lee C.H., Lin Y., Tseng Y.-M., Hsieh C.-L., Chen C.-H., Tsai C.-H., Hsieh C.-T., Shen J., et al. // ACS Nano. 2011. V. 5. № 6. P. 4337–4344. doi: 10.1021/nn102752aTao Y., Li Z., Ju E., Ren J., Qu X. // Nanoscale. 2013. V.5. № 13. P. 6154–6160. doi: 10.1039/c3nr01326jTao Y., Li Z., Ju E., Ren J., Qu X. // Nanoscale. 2013. V. 5. № 13. P. 6154–6160. doi: 10.1039/c3nr01326jLiang L., Lu Y., Zhang R., Care A., Ortega T.A., Deyev S.M., Qian Y., Zvyagin A.V. // Acta Biomaterialia. 2017. V. 51. P. 461–470. doi: 10.1016/j.actbio.2017.01.004Kefayat A., Ghahremani F., Motaghi H., Amouheidari A. // Nanomedicine. 2019. V. 16. P. 173–184. doi: 10.1016/j.nano.2018.12.007Hainfeld J.F., Smilowitz H.M., O’Connor M.J., Dilmanian F.A., Slatkin D.N. // Nanomed. 2013. V. 8. P. 1601–1609. doi: 10.2217/nnm.12.165Lopez-Chaves C., Soto-Alvaredo J., Montes-Bayon M., Bettmer J., Llopis J., Sanchez-Gonzalez C. // Nanomedicine. 2018. V. 14. № 1. P. 1–12. doi: 10.1016/j.nano.2017.08.011.Raftis J.B., Miller M.R. // Nano Today. 2019. V. 26. P. 8–12. doi: 10.1016/j.nantod.2019.03.010Xu X., Ray R., Gu Y., Ploehn H.J., Gearheart L., Raker K., Scrivens W.A. // J. Am. Chem. Soc. 2004. V. 126. P. 12736–12737. doi: 10.1021/ja040082hSun Y.P., Zhou B., Lin Y., Wang W., Fernando K.A., Pathak P., Meziani M.J., Harruff B.A., Wang X., Wang H. et al. // J. Am. Chem. Soc. 2006. V. 128. P. 7756–7757. doi: 10.1021/ja062677dSun Y.P., Zhou B., Lin Y., Wang W., Fernando K.A., Pathak P., Meziani M.J., Harruff B.A., Wang X., Wang H., et al. // J. Am. Chem. Soc. 2006. V. 128. P. 7756–7757. doi: 10.1021/ja062677dHimaja A.L., Karthik P.S., Singh S.P. // Chem. Rec. 2015. V. 15. P. 595–615. doi: 10.1002/tcr.201402090Mishra V., Patil A., Thakur S., Kesharwani P. // Drug Discov. Today. 2018. V. 23. № 6. P. 1219–1232. doi: 10.1016/j.drudis.2018.01.006Boakye-Yiadom K.O., Kesse S., Opoku-Damoah Y., Filli M.S., Aquib M., Joelle M.M.B., Farooq M.A., Mavlyanova R., Raza F., Bavi R. et al. // Int. J. Pharm. 2019. V. 10. № 564. P. 308–317. doi: 10.1016/j.ijpharm.2019.04.055Boakye-Yiadom K.O., Kesse S., Opoku-Damoah Y., Filli M.S., Aquib M., Joelle M.M.B., Farooq M.A., Mavlyanova R., Raza F., Bavi R., et al. // Int. J. Pharm. 2019. V. 10. № 564. P. 308–317. doi: 10.1016/j.ijpharm.2019.04.055Du J., Xu N., Fan J., Sun W., Peng X. // Small. 2019. V. 15. № 32. e1805087. doi: 10.1002/smll.201805087Nekoueian K., Amiri M., Sillanpää M., Marken F., Boukherroub R., Szunerits S. // Chem. Soc. Rev. 2019. V. 48. № 15. P. 4281–4316. doi: 10.1039/c8cs00445eLi J., Tang K., Yu J., Wang H., Tu M., Wang X. // R. Soc. Open Sci. 2019. V. 6. № 1. P. 181557. doi: 10.1098/rsos.181557Lu S.S., Guo S.S., Xu P.X., Li X.R., Zhao Y.M., Gu W., Xue M. // Int. J. Nanomedicine. 2016. V. 11. P. 6325–6336. doi: 10.2147/IJN.S119252Algarra M., Campos B.B., Radotić K., Mutavdžić D., Bandosz T., Jiménez-Jiménez J., Rodriguez-Castellón E., Esteves da Silva J.C.G. // J. Mater. Chem. A. 2014. № 2. Р. 8342–8351. doi: 10.1039/C4TA00264DAlgarra M., Campos B.B., Radotić K., Mutavdzǐć D., Bandosz T., Jiménez-Jiménez J., Rodriguez-Castellón E., Esteves da Silva J.C.G. // J. Mater. Chem. A. 2014. № 2. Р. 8342–8351. doi: 10.1039/C4TA00264DKim Y., Jang G., Lee T.S. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2015. V. 7. Р. 15649–15657. doi: 10.1021/acsami.5b04724Zhang Z., Shi Y., Pan Y., Cheng X., Zhang L., Chen J., Li M.-J., Yi C. // J. Mater. Chem. B. 2014. V. 2. Р. 5020–5027. doi: 10.1039/c4tb00677aYuan C., Liu B., Liu F., Han M.Y., Zhang Z. // Anal. Chem. 2014. V. 86. № 2. Р. 1123–1130. doi: 10.1021/ac402894zZhu A., Qu Q., Shao X., Kong B., Tian Y. // Angew. Chem. Int. Ed. 2012. V. 51. Р. 7185–7189. doi: 10.1002/anie.201109089Qu Q., Zhu A., Shao X., Shi G., Tian Y. // Chem. Commun. 2012. V. 48. Р. 5473–5475. doi: 10.1039/c2cc31000gZhu L., Cui X., Wu J., Wang Z., Wang P., Hou Y., Yang M. // Anal. Methods. 2014. V. 6. Р. 4430–4436. doi: 10.1039/C4AY00717DWu Y., Wei P., Pengpumkiat S., Schumacher E.A., Remcho V.T. // Anal. Chem. 2015. V. 87. P. 8510–8516. doi: 10.1021/acs.analchem.5b02019Shi W., Li X., Ma H. // Angew. Chem. Int. Ed. 2012. V. 51. Р. 6432–6435. doi: 10.1002/anie.201202533Du F., Ming Y., Zeng F., Yu C., Wu S. // Nanotechnology. 2013. V. 24. Р. 365101. doi: 10.1088/0957-4484/24/36/365101Wang C., Hu T., Thomas T., Song S., Wen Z., Wang C., Song Q., Yang M. // Royal Soc. Chem. 2018. V. 10. P. 21809–21817. doi: 10.1039/c8nr07445cZheng M., Liu S., Li J., Qu D., Zhao H., Guan X., Hu X., Xie Z., Jing X., Sun Z. // Adv. Mater. 2014. V. 26. Р. 3554–3560. doi: 10.1002/adma.201306192Liu Q., Xu S., Niu C., Li M., He D., Lu Z., Ma L., Na N., Huang F., Jiang H. et al. // Biosens. Bioelectron. 2015. V. 64. Р. 119–125. doi: 10.1016/j.bios.2014.08.052Liu Q., Xu S., Niu C., Li M., He D., Lu Z., Ma L., Na N., Huang F., Jiang H., et al. // Biosens. Bioelectron. 2015. V. 64. Р. 119–125. doi: 10.1016/j.bios.2014.08.052Mewada A., Pandey S., Thakur M., Jadhav D., Sharon M. // J. Mater. Chem. B. 2014. V. 2. Р. 698–705. doi: 10.1039/c3tb21436bSingh R.K., Patel K.D., Mahapatra C., Kang M.S., Kim H.-W. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2016. V. 8. № 37. P. 24433–24444. doi: 10.1021/acsami.6b07494Liu J.J., Li D.W., Zhang K., Yang M.X., Sun H.C., Yang B. // Small. 2018. V. 14. P. 1703919. doi: 10.1002/smll.201703919Li Y., Bai G., Zeng S., Hao J. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2019. V. 11. № 5. P. 4737–4744. doi: 10.1021/acsami.8b14877Sreenivasan V.K., Zvyagin A.V., Goldys E.M. // J. Phys. Condens. Matter. 2013. V. 25. № 19. P. 194101. doi: 10.1088/0953-8984/25/19/194101Montalti M., Cantelli A., Battistelli G. // Chem. Soc. Rev. 2015. V. 44. № 14. P. 4853–4921. doi: 10.1039/c4cs00486hAharonovich I., Greentree A.D., Prawer S. // Nat. Photonics. 2011. V. 5. P. 397–405. doi: 10.1038/nphoton.2011.54Xing Y., Dai L. // Nanomed. (Lond). 2009. V. 4. № 2. P. 207–218. doi: 10.2217/17435889.4.2.207Xing Y., Dai L. // Nanomed. (London). 2009. V. 4. № 2. P. 207–218. doi: 10.2217/17435889.4.2.207Vaijayanthimala V., Cheng P.Y., Yeh S.H., Liu K.K., Hsiao C.H., Chao J.I., Chang H.C. // Biomaterials. 2012. V. 33. № 31. P. 7794–7802. doi: 10.1016/j.biomaterials.2012.06.084.Wu T.J., Tzeng Y.K., Chang W.W., Cheng C.A., Kuo Y., Chien C.H., Chang H.C., Yu J. // Nat. Nanotechnol. 2013. V. 8. № 9. P. 682–689. doi: 10.1038/nnano.2013.147Gerstenhaber J.A., Barone F.C., Marcinkiewicz C., Li J., Shiloh A.O., Sternberg M., Lelkes P.I., Feuerstein G. // Int. J. Nanomedicine. 2017. V. 12. P. 8471–8482. doi: 10.2147/IJN.S146946van der Laan K., Hasani M., Zheng T., Schirhagl R. // Small. 2018. V. 14. № 19. e1703838. doi: 10.1002/smll.201703838Kharin A., Rogov A., Geloen A., Lysenko V., Bonacina L. // J. Phys.: Conf. Series. 2016. V. 740. P. 012010. doi:10.1088/1742-6596/740/1/012010Kharin A., Rogov A., Geloen A., Lysenko V., Bonacina L. // J. Phys. Conf. Series. 2016. V. 740. P. 012010. doi:10.1088/1742-6596/740/1/012010Mohan N., Chen C.-S., Hsieh H.-H., Wu Y.-C., Chang H.-C. // Nano Lett. 2010. V. 10. № 9. P. 3692–3699. doi: 10.1021/nl1021909Faklaris O., Joshi V., Irinopoulou T., Tauc P., Sennour M., Girard H., Gesset C., Arnault J.-C., Thorel A., Boudou J.-P. et al. // ACS Nano. 2009. V. 3. № 12. P. 3955–3962. doi: 10.1021/nn901014jFaklaris O., Joshi V., Irinopoulou T., Tauc P., Sennour M., Girard H., Gesset C., Arnault J.-C., Thorel A., Boudou J.-P., et al. // ACS Nano. 2009. V. 3. № 12. P. 3955–3962. doi: 10.1021/nn901014jSchrand A.M., Huang H., Carlson C., Schlager J.J., Ōsawa E., Hussain S.M., Dai L.. // J. Phys. Chem. B. 2007. V. 111. № 1. P. 2–7. doi: 10.1021/jp066387vSchrand A.M., Huang H., Carlson C., Schlager J.J., Ōsawa E., Hussain S.M., Dai L. // J. Phys. Chem. B. 2007. V. 111. № 1. P. 2–7. doi: 10.1021/jp066387vVaijayanthimala V., Tzeng Y.K., Chang H.C., Li C.L. // Nanotechnology. 2009. V. 20. № 42. P. 425103. doi: 10.1088/0957-4484/20/42/425103Huang Y.A., Kao C.W., Liu K.K., Huang H.S., Chiang M.H., Soo C.R., Chang H.C., Chiu T.W., Chao J.I., Hwang E. // Sci. Rep. 2014. V. 4. P. 6919. doi: 10.1038/srep06919Fu C.-C., Lee H.-Y., Chen K., Lim T.-S., Wu H.-Y., Lin P.-K., Wei P.-K., Tsao P.-H., Chang H.-C., Fann W. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. V. 104. P. 727–732. doi: 10.1073/pnas.0605409104Zurbuchen M.A., Lake M.P., Kohan S.A., Leung B., Bouchard L.-S. // Sci. Rep. 2013. V. 3. P. 2668. doi: 10.1038/srep02668Huang H., Pierstorff E., Osawa E., Ho D. // Nano Lett. 2007. V. 7. P. 3305–3314. doi: 10.1021/nl071521oSachdeva M.S. // Expert Opin. Investig. Drugs. 1998. V. 7. P. 1849–1864. doi: 10.1517/13543784.7.11.1849Chu Z., Miu K., Lung P., Zhang S., Zhao S., Chang H.-C., Lin G., Li Q. // Sci. Rep. 2015. V. 5. P. 11661. doi: 10.1038/srep11661Yang L., Webster T.J. // IEEE Pulse. 2014. V. 5. № 2. P. 34–39. doi: 10.1109/MPUL.2013.2296800Canham L.T. // Adv Mater. 1995. V. 7. P. 1033–1037. doi: 10.1002/adma.19950071215Canham L.T. // Adv. Mater. 1995. V. 7. P. 1033–1037. doi: 10.1002/adma.19950071215Park J.H., Gu L., von Maltzahn G., Ruoslahti E., Bhatia S.N., Sailor M.J. // Nat. Mater. 2009. V. 8. № 4. P. 331–336. doi: 10.1038/nmat2398Chinnathambi S., Chen S., Ganesan S., Hanagata N. // Adv. Healthc. Mater. 2014. V. 3. № 1. P. 10–29. doi: 10.1002/adhm.201300157Dasog M., De los Reyes G.B., Titova L.V., Hegmann F.A., Veinot J.G. // ACS Nano. 2014. V. 8. № 9. P. 9636–9648. doi: 10.1021/nn504109aTakagahara T. Takeda K. // Phys. Rev. B Condens. Matter. 1992. V.46. № 23. P. 15578–15581. doi: 10.1103/physrevb.46.15578Takagahara T., Takeda K. // Phys. Rev. B Condens. Matter. 1992. V. 46. № 23. P. 15578–15581. doi: 10.1103/physrevb.46.15578Kim D., Kang J., Wang T., Ryu H.G., Zuidema J.M., Joo J., Kim M., Huh Y., Jung J., Ahn K.H. et al. // Adv. Mater. 2017. V. 29. № 39. P. 1703309. doi: 10.1002/adma.201703309Kim D., Kang J., Wang T., Ryu H.G., Zuidema J.M., Joo J., Kim M., Huh Y., Jung J., Ahn K.H., et al. // Adv. Mater. 2017. V. 29. № 39. P. 1703309. doi: 10.1002/adma.201703309Chu B., Wang H., Song B., Peng F., Su Y., He Y. // Anal. Chem. 2016. V. 88. № 18. P. 9235–9242. doi: 10.1021/acs.analchem.6b02488Ma S.D., Chen Y.L., Feng J., Liu J.J., Zuo X.W., Chen X.G. // Anal. Chem. 2016. V. 88. № 21. P. 10474–10481. doi: 10.1021/acs.analchem.6b02448Wang H., He Y. // Sensors (Basel). 2017. V. 17. № 2. E268. doi: 10.3390/s17020268.Erogbogbo F., Tien C.A., Chang C.W., Yong K.T., Law W.C., Ding H., Roy I., Swihart M.T., Prasad P.N. // Bioconjug. Chem. 2011. V. 22. № 6. P. 1081–1088. doi: 10.1021/bc100552pTolstik E., Osminkina L.A., Matthäus C., Burkhardt M., Tsurikov K.E., Natashina U.A., Timoshenko V.Y., Heintzmann R., Popp J., Sivakov V. // Nanomedicine. 2016. V. 12. № 7. P. 1931–1940. doi: 10.1016/j.nano.2016.04.004Cao Z., Peng F., Hu Z., Chu B., Zhong Y., Su Y., He S., He Y. // Nanoscale. 2017. V. 9. № 22. P. 7602–7611. doi: 10.1039/c7nr00530jWang Q., Bao Y., Ahire J., Chao Y. // Adv. Healthc. Mater. 2012. V. 2. Р. 189–198. doi: 10.1002/adhm.201100010Yu X., Yang K., Chen X., Li W. // Biomaterials. 2017. V. 143. Р. 120–129. doi: 10.1016/j.biomaterials.2017.07.037Bimbo L.M., Mäkilä E., Laaksonen T., Laaksonen T., Laaksonen P., Strommer K., Kauppinen E.I., Salonen J., Linder M.B., Hirvonen J., Santos H.A. // Biomaterials. 2011. V. 32. № 34. P. 9089–9099. doi: 10.1016/j.biomaterials.2011.08.011Foraker A.B., Walczak R.J., Cohen M.H., Boiarski T.A., Grove C.F., Swaan P.W. // Pharm. Res. 2003. № 20. Р. 110–116. doi: 10.1023/a:1022211127890Schwartz M.P., Yu C., Alvarez S.D., Migliori B., Godin D., Chao L., Sailor M.J. // Phys. Status Solidi A. 2007. V. 204. Р. 1444–1448. doi: 10.1002/pssa.200674380Pastor E., Matveeva E., Valle-Gallego A., Goycoolea F.M., Garcia-Fuentes M. // Colloid Surf. B. 2011. V. 88. Р. 601–609. doi: 10.1016/j.colsurfb.2011.07.049Wu E.C., Park J.-H., Park J., Segal E., Cunin F., Sailor M.J. // ACS Nano. 2008. V. 2. P. 2401–2409. doi: 10.1021/nn800592qSalonen J., Laitinen L., Kaukonen A.M., Tuura J., Björkqvist M., Heikkilä T., Vähä-Heikkilä K., Hirvonen J., Lehto V.-P. // J. Control. Release. 2005. V. 108. P. 362–374. doi: 10.1016/j.jconrel.2005.08.017Salonen J., Kaukonen A.M., Hirvonen J., Lehto V.P. // J. Pharm. Sci. 2008. V. 97. № 2. P. 632–653. doi: 10.1002/jps.20999Santos H.A., Salonen J., Bimbo L.M., Lehto V.-P., Peltonen L., Hirvonen J. // J. Drug Deliv. Sci. Tech. 2011. V. 21. № 2. P. 139–155. doi: 10.1016/S1773-2247(11)50016-4Wang F., Hui H., Barnes T.J., Barnett C., Prestidge C.A. // Mol. Pharmaceutics. 2010. V. 7. № 1. P. 227–236. doi: 10.1021/mp900221eZvyagin A.V., Song Z., Nadort A., Sreenivasan V.K.A., Deyev S.M. // Handbook of Nano-Optics and Nanophotonics. Berlin, Heidelberg: Springer, 2013. P. 563–596. doi: 10.1007/978-3-642-31066-9_15Zvyagin A.V., Song Z., Nadort A., Sreenivasan V.K.A., Deyev S.M. Handbook of Nano-Optics and Nanophotonics. Berlin, Heidelberg: Springer, 2013. P. 563–596. doi: 10.1007/978-3-642-31066-9_15Tuchin V.V. // J. Biomed. Photon. Eng. 2016. V. 2. № 3. P. 3042. doi: 10.18287/JBPE16.02.030201Min Y., Li J., Liu F., Padmanabhan P., Yeow E.K., Xing B. // Nanomaterials (Basel). 2014. V. 4. № 1. P. 129–154. doi: 10.3390/nano4010129Lingeshwar Reddy K., Balaji R., Kumar A., Krishnan V. // Small. 2018. V. 14. № 37. e1801304. doi: 10.1002/smll.201801304Song Z., Anissimov Y.G., Zhao J., Nechaev A.V., Nadort A., Jin D., Prow T.W., Roberts M.S., Zvyagin A.V. // J. Biomed. Opt. 2012. V. 18. P. 061215. doi: 10.1117/1.JBO.18.6.061215Wen S., Zhou J., Zheng K., Bednarkiewicz A., Liu X., Jin D. // Nat. Commun. 2018. V. 9. № 1. P. 2415. doi: 10.1038/s41467-018-04813-5Zhan Q., Qian J., Liang H., Somesfalean G., Wang D., He S., Zhang Z., Andersson-Engels S. // ACS Nano. 2011. V. 5. № 5. P. 3744–3757. doi: 10.1021/nn200110jSingh R., Dumlupinar G., Andersson-Engels S., Melgar S. // Int. J. Nanomed. 2019. V. 14. P. 1027–1038. doi: 10.2147/IJN.S188887Zhong Y., Tian G., Gu Z., Yang Y., Gu L., Zhao Y., Ma Y., Yao J. // Adv. Mater. 2014. V. 26. № 18. P. 2831–2837. doi: 10.1002/adma.201304903.Zhou J., Liu Q., Feng W., Sun Y., Li F. // Chem. Rev. 2015. V. 115. № 1. P. 395–465. doi: 10.1021/cr400478fGeneralova A.N., Kochneva I.K., Khaydukov E.V., Semchishen V.A., Guller A.E., Nechaev A.V., Shekhter A.B., Zubov V.P., Zvyagin A.V., Deyev S.M. // Nanoscale. 2015. V. 7. № 5. P. 1709–1717. doi: 10.1039/c4nr05908eGuryev E.L., Shilyagina N.Y., Kostyuk A.B., Sencha L.M., Balalaeva I.V., Vodeneev V.A., Kutova O.M., Lyubeshkin A.V., Yakubovskaya R.I., Pankratov A.A. et al. // Toxicol. Sci. V. 170. № 1. 2019. P. 123–132. doi: 10.1093/toxsci/kfz086Guryev E.L., Shilyagina N.Y., Kostyuk A.B., Sencha L.M., Balalaeva I.V., Vodeneev V.A., Kutova O.M., Lyubeshkin A.V., Yakubovskaya R.I., Pankratov A.A., et al. // Toxicol. Sci. 2019. V. 170. № 1. P. 123–132. doi: 10.1093/toxsci/kfz086Muhr V., Wilhelm S., Hirsch T., Wolfbeis O.S. // Acc. Chem. Res. 2014. V. 47. № 12. P. 3481–3493. doi: 10.1021/ar500253gOliveira H., Bednarkiewicz A., Falk A., Fröhlich E., Lisjak D., Prina-Mello A., Resch S., Schimpel C., Vrček I.V., Wysokińska E. et al. // Adv. Healthc. Mater. 2019. V. 8. № 1. e1801233. doi: 10.1002/adhm.201801233Oliveira H., Bednarkiewicz A., Falk A., Fröhlich E., Lisjak D., Prina-Mello A., Resch S., Schimpel C., Vrček I.V., Wysokińska E., et al. // Adv. Healthc. Mater. 2019. V. 8. № 1. e1801233. doi: 10.1002/adhm.201801233Chen F., Bu W., Cai W., Shi J. // Curr. Mol. Med. 2013. V. 13. № 10. P. 1613–1632. doi: 10.2174/1566524013666131111122133Park Y.I., Lee K.T., Suh Y.D., Hyeon T. // Chem. Soc. Rev. 2015. V. 44. № 6. P. 1302–1317. doi: 10.1039/c4cs00173gDaCosta M.V., Doughan S., Han Y., Krull U.J. // Anal. Chim. Acta. 2014. V. 832. P. 1–33. doi: 10.1016/j.aca.2014.04.030Radunz S., Andresen E., Würth C., Koerdt A., Tschiche H.R., Resch-Genger U. // Anal. Chem. 2019. V. 91. № 12. P. 7756–7764. doi: 10.1021/acs.analchem.9b01174Khaydukov E.V., Mironova K.E., Semchishen V.A., Generalova A.N., Nechaev A.V., Khochenkov D.A., Stepanova E.V., Lebedev O.I., Zvyagin A.V., Deyev S.M. et al. // Sci. Rep. 2016. V. 6. P. 35103. doi: 10.1038/srep35103Khaydukov E.V., Mironova K.E., Semchishen V.A., Generalova A.N., Nechaev A.V., Khochenkov D.A., Stepanova E.V., Lebedev O.I., Zvyagin A.V., Deyev S.M., et al. // Sci. Rep. 2016. V. 6. P. 35103. doi: 10.1038/srep35103Li P., Yan Y., Chen B., Zhang P., Wang S., Zhou J., Fan H., Wang Y., Huang X. // Biomater. Sci. 2018. V. 6. № 4. P. 877–884. doi: 10.1039/c7bm01113jGrebenik E.A., Kostyuk A.B., Deyev S.M. // Russ. Chem. Rev. 2016. V. 85. № 12. P. 1277-1296. doi: 10.1070/RCR4663Grebenik E.A., Kostyuk A.B., Deyev S.M. // Russ. Chem. Rev. 2016. V. 85. № 12. P. 1277–1296. doi: 10.1070/RCR4663Shanwar S., Liang L., Nechaev A.V., Bausheva D.K., Balalaeva I.V., Vodeneev V.A., Roy I., Zvyagin A.V., Guryev E.L. // Materials. 2021. V. 14. № 7. P. 1657. doi: 10.3390/ma14071657Shramova E.I., Kotlyar A.B., Lebedenko E.N., Deyev S.M., Proshkina G.M. // Acta Naturae. 2020. Т. 12. №3. P. 102-113. doi: 10.32607/actanaturae.11028Shramova E.I., Kotlyar A.B., Lebedenko E.N., Deyev S.M., Proshkina G.M. // Acta Naturae. 2020. V. 12. № 3. P. 102–113. doi: 10.32607/actanaturae.11028Grebenik E.A., Nadort A., Generalova A.N., Nechaev A.V., Sreenivasan V.K.A., Khaydukov E.V., Semchishen V.A., Popov A.P., Sokolov V.I., Akhmanov A.S. et al. // J. Biomed. Optics. 2013. № 7. V. 18. P. 076004. doi: 10.1117/1.JBO.18.7.076004Grebenik E.A., Nadort A., Generalova A.N., Nechaev A.V., Sreenivasan V.K.A., Khaydukov E.V., Semchishen V.A., Popov A.P., Sokolov V.I., Akhmanov A.S., et al. // J. Biomed. Optics. 2013. V. 18. № 7. P. 076004. doi: 10.1117/1.JBO.18.7.076004Grebenik E.A., Generalova A.N., Nechaev A.V., Khaydukov E.V., Mironova K.E., Stremovskiy O.A., Lebedenko E.N., Zvyagin A.V., Deyev S.M. // Acta Naturae. 2014. V. 6. № 4. P. 48–53. doi: 10.32607/20758251-2014-6-4-48-53Rocheva V.V., Savelyev A.G., Nechaev A.V., Generalova A.N., Semchishen V.A., Zvyagin A.V., Khaydukov E.V. // Opt. Spectrosc. 2019. V. 126. № 1. P. 92–94. doi: 10.1134/S0030400X19010144Polikarpov D., Liang L., Care A., Sunna A., Campbell D., Walsh B., Balalaeva I.V., Zvyagin A.V., Gillatt D., Guryev E.L. // Biomolecules. 2019. V. 9. № 12. P. 820. doi: 10.3390/biom9120820Guryev E.L., Smyshlyaeva A.S., Shilyagina N.Y., Shanwar S., Kostyuk A.B., Shulga A.A., Konovalova E.V., Zvyagin A.V., Deyev S.M., Petrov R.V. // Dokl. Biochem. Biophysic. 2020. V. 491. № 1. P. 73–76. doi: 10.1134/S160767292002009XGuryev E.L., Smyshlyaeva A.S., Shilyagina N.Y., Sokolova E.A., Shanwar S., Kostyuk A.B., Lyubeshkin A.V., Schulga A.A., Konovalova E.V., Lin Q., Roy I., Balalaeva I.V., Deyev S.M., Zvyagin A.V. // Molecules. 2020. V. 25. № 18. P. 4302. doi: 10.3390/molecules25184302Guryev E.L., Volodina N.O., Shilyagina N.Yu., Gudkov S.V., Balalaeva I.V., Volovetskii A.B., Lyubeshkin A.V., Sen A.V., Ermilov S.A., Vodeneev V.A. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2018. V. 115. № 39. P. 9690–9695. doi: 10.1073/pnas.1809258115Guryev E.L., Volodina N.O., Shilyagina N.Yu., Gudkov S.V., Balalaeva I.V., Volovetskii A.B., Lyubeshkin A.V., Sen A.V., Ermilov S.A., Vodeneev V.A., et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2018. V. 115. № 39. P. 9690–9695. doi: 10.1073/pnas.1809258115Liang L., Care A., Zhang R., Lu Y., Packer N.H., Sunna A., Qian Y., Zvyagin A.V. // ACS Appl. Mat. Interfaces. 2016. V. 8. № 19. P. 11945–11953. doi: 10.1021/acsami.6b00713Mironova K.E., Khochenkov D.A., Generalova A.N., Rocheva V.V., Sholina N.V., Nechaev A.V., Semchishen V.A., Deyev S.M., Zvyagin A.V., Khaydukov E.V. // Nanoscale. 2017. V. 9. № 39. P. 14921–14928. doi: 10.1039/c7nr04092jNikitin M.P., Zelepukin I.V., Shipunova V.O., Sokolov I.L., Deyev S.M., Nikitin P.I. // Nat. Biomed. Eng. 2020. V. 4. № 7. P. 717–731. doi: 10.1038/s41551-020-0581-2Zelepukin I.V., Yaremenko A.V., Yuryev M.V., Mirkasymov A.B., Sokolov I.L., Deyev S.M., Nikitin P.I., Nikitin M.P. // J. Cont. Release. 2020. V. 326. P. 181–191. doi: 10.1016/j.jconrel.2020.07.014Zelepukin I.V., Yaremenko A.V., Yuryev M.V., Mirkasymov A.B., Sokolov I.L., Deyev S.M., Nikitin P.I., Nikitin M.P. // J. Control. Release. 2020. V. 326. P. 181–191. doi: 10.1016/j.jconrel.2020.07.014Shilova O.N., Deyev S.M. // Acta Naturae. 2019. V. 11. № 4. P. 42-53. doi: 10.32607/20758251-2019-11-4-42-53Shilova O.N., Deyev S.M. // Acta Naturae. 2019. V. 11. № 4. P. 42–53. doi: 10.32607/20758251-2019-11-4-42-53